Платформа по детской нутрициологии в помощь практикующему врачу-педиатру
Полный доступ для зарегистрированных пользователей
Платформа по детской нутрициологии в помощь практикующему врачу

Олигосахариды грудного молока — важнейший ингредиент грудного молока, влияющий на здоровье младенцев

Скачать PDF

1ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России, Москва, Россия;

2ГБУЗ МО «Химкинская больница», Химки, Россия

Контактная информация:

Захарова Ирина Николаевна — д-р мед. наук, проф., зав. каф. педиатрии им. акад. Г.Н. Сперанского ФГБОУ ДПО РМАНПО, засл. врач РФ. E-mail: zakharova-rmapo@yandex.ru

Оробинская Яна Владимировна — аспирант каф. педиатрии им. акад. Г.Н. Сперанского ФГБОУ ДПО РМАНПО, поликлиника «Мама и малыш» ГБУЗ МО ХБ

Сугян Нарине Григорьевна — канд. мед. наук, доц. каф. педиатрии им. акад. Г.Н. Сперанского ФГБОУ ДПО РМАНПО, зам. глав. врача ГБУЗ МО ХБ. E-mail: narine6969@mail.ru

Бережная Ирина Владимировна — канд. мед. наук, доц. каф. педиатрии им. акад. Г.Н. Сперанского ФГБОУ ДПО РМАНПО

Статья поступила 19.08.2024, принята к печати 03.09.2024

Грудное вскармливание остается «золотым стандартом» питания детей первых лет жизни. Однако такие факторы, как гипогалактия, стресс матери, проблемы со здоровьем и просто отсутствие желания кормить грудью, лишают ребенка грудного молока (ГМ) и ставят перед педиатром вопрос о выборе альтернативного питания. Состав ГМ сложен, динамичен и вызывает научный интерес, а внимание большинства ученых направлено на олигосахариды ГМ (ОГМ). Огромное количество позитивных эффектов ОГМ доказано в отношении здоровья ребенка. Они касаются не только формирования кишечной микробиоты, становления иммунного ответа, но и влияния на барьерную функцию кишечника и защиты от патогенов. При отсутствии грудного вскармливания можно использовать современные искусственные смеси, содержащие ОГМ. В настоящее время добавление комбинации из 5 ОГМ является многообещающим и эффективным под- ходом к поддержанию общего здоровья детей, находящихся на искусственном вскармливании.

Ключевые слова: грудное вскармливание, грудное молоко, олигосахариды грудного молока, искусственное вскармливание, смеси, микробиота кишечника, микробиом, галактоолигосахариды, 2’-фукозиллактоза, дифукозиллактоза, сиалиллактоза, лакто-N-тетраоза, лакто-N-неотетраоза, галактоолигосахариды, фруктоолигосахариды

Цит.: Захарова И.Н., Оробинская Я.В., Сугян Н.Г., Бережная И.В. Олигосахариды грудного молока — важнейший ингредиент грудного молока, влияющий на здоровье младенцев. Педиатрия. Consilium Medicum. 2024;3:326—333. DOI: 10.26442/26586630.2024.3.202958 © ООО «КОНСИЛИУМ МЕДИКУМ», 2024 г

Введение

Грудное вскармливание (ГВ) имеет многочисленные преимущества для здоровья не только матери (более низкий риск рака груди и яичников, гипертонии и сахарного диабета 2-го типа), но и новорожденного ребенка (краткосрочные и долгосрочные преимущества). Краткосрочные преимущества включают меньшее количество случаев секреторной диареи, пневмонии, среднего отита, атопического дерматита и синдрома внезапной детской смерти. Долгосрочные преимущества уменьшают количество случаев сахарного диабета 2-го типа, лейкемии, расстройств аутистического спектра и ожирения, а также благотворно влияют на интеллект и социальное поведение. Предполагается, что разница в заболеваемости и смертности между младенцами на ГВ и искусственном вскармливании (ИВ) связана с составом грудного молока (ГМ). Взаимосвязь между ним и здоровьем младенца основана на питательных и биологически активных компонентах ГМ, включая олигосахариды ГМ (ОГМ) [1].

В XIX–XX вв. смертность была особенно высокой у младенцев, которые не получали ГМ [2]. В то время (в 1886 г.) австрийский педиатр и микробиолог Теодор Эшерих обнаружил взаимосвязь между кишечными бактериями и физиологией пищеварения. Примерно в это же время выявлены различия в бактериальном составе кала у детей, находящихся на разных видах вскармливания, поэтому предположено, что формирующаяся в результате ГВ кишечная микробиота связана с улучшением здоровья младенцев [3, 4]. Позднее, в 1888 г., отмечено, что в ГМ содержится «другой тип лактозы», чем в коровьем молоке, и только 40 лет спустя олигосахариды идентифицированы как наиболее важный бифидогенный фактор [5, 6]. Данный научный прорыв произошел, когда химик Ричард Кун и педиатр Пол Дьердь сообщили о том, что сывороточная фракция ГМ содержит фактор, стимулирующий рост Lactobacillus bifidus (позже переклассифицированный как Bifidobacterium bifidus). В последующие годы группа Жана Монтрея во Франции и группа Ричарда Куна в Германии обнаружили и охарактеризовали более десятка индивидуальных ОГМ [7]. Однако лишь недавно ученые и промышленность смогли получить первые олигосахариды, структурно идентичные тем, которые содержатся в ГМ, что и позволило добавить их в смеси для детского питания [8].

Структура и особенности ОГМ

В настоящее время идентифицировано более 200 структурно различных ОГМ [9], которые представляют собой многофункциональные, неконъюгированные и неперевариваемые гликаны, состоящие из 5 моносахаридных компонентов: D-галактозы (Gal), D-глюкозы (Glc), L-фукозы (Fuc), N-ацетилглюкозамина (GlcNAc), производной сиаловой кислоты (Sia) — N-ацетилнейраминовой кислоты [10]. Все приведенные моносахариды присоединяются к молекуле-предшественнику лактозе, которая образует основную молекулу и ферментативно удлиняет ядро лактозы. Такая олигосахаридная цепь может быть фукозилирована с помощью связей α1—2 (2’-фукозиллактозы — 2’-FL), α1—3 (3’-FL) или α1—4 и/или сиалилирована с помощью связей α2—3 (3-сиалиллактозы — 3’-SL) или α2—6 (6’-SL) [11].

ОГМ выполняют ряд полезных физиологических функций, включая создание и поддержание здорового микробиома кишечника, развитие иммунной системы и модуляцию воспалительных реакций, а также укрепление желудочно-кишечного барьера, стимулирование развития нейронов и когнитивных функций (рис. 1) [7].

Существуют 3 основные категории ОГМ [12].

  1. Нейтральные фукозилированные ОГМ — 35–50% (2’-FL, дифукозиллактоза — DFL).
  2. Кислые сиалилированные ОГМ — 12–14% (3’-SL, 6’-SL).
  3. Нейтральные нефукозилированные ОГМ — 42–55% (лакто-N-тетраоза — LNT, лакто-N-неотетраоза — LNnT).

Рис. 1. Функции ОГМ

Нейтральные фукозилированные ОГМ

Наиболее изученным представителем нейтральных фукозилированных ОГМ является 2’-FL. Концентрация этого молочного олигосахарида составляет примерно 30% общего количества ОГМ. Показано, что потребление 2’-FL в раннем возрасте постоянно изменяет кишечный микробиом и способствует его развитию, оказывая ингибирующее действие на прикрепление микроорганизмов к слизистой оболочке кишечника [13, 14]. В исследованиях на средах с различными ОГМ, включая 2’-FL, наблюдали дифференциальный рост Bifidobacterium longum ssp. infantis, Bifidobacterium bifidum и Bifidobacterium infantis, а также некоторых видов Akkermansia [15, 16]. ОГМ являются предпочтительным субстратом для B. infantis и других указанных штаммов бифидобактерий, что способствует снижению количества питательных веществ, доступных потенциально вредным бактериям, а также держит их рост под контролем. Кроме того, B. infantis продуцируют короткоцепочечные жирные кислоты (КЦЖК). Они являются важными медиаторами, которые поддерживают целостность кишечника и снабжают энергией эпителиальные клетки, помогающие создать среду, благоприятствующую росту комменсальных бактерий вместо потенциальных патогенов [17, 18].

Исследования на мышиной модели показывают, что 2’-FL ослабляет инвазию C. jejuni, способствует восстановлению барьера слизистой оболочки кишечника и подавляет воспаление при язвенном колите, а также демонстрирует новый прямой эффект в защите эпителиальных клеток тонкой кишки от апоптоза, предотвращая мукозит кишечника [19–21].

Кислые сиалилированные ОГМ

3’-SL и 6’-SL являются наиболее распространенным источником сиаловой кислоты (Sia) для новорожденного, на долю которых приходится примерно 75% ее содержания в ГМ [22]. Соответственно, потребление сиалилированных олигосахаридов с ГМ может способствовать улучшению когнитивных способностей. Доказано, что они влияют на развитие мозга и способность к обучению, а также участвуют в гомеостазе кишечной микробиоты, повышая адгезию штамма B. infantis к клеткам кишечника, формируют иммунитет [5, 23, 24]. A. Tarr и соавт. (2015 г.) в своем исследовании сообщили, что ОГМ поддерживают нормальные микробные сообщества и поведенческие реакции во время стресса, потенциально воздействуя на ось «микробиота кишечника—мозг». Данные эффекты очевидны у мышей, которых кормили 3’-SL, 6’-SL и подвергали воздействию «стрессора». Микробное сообщество у этих подопытных существенно не изменилось по сравнению с контрольной группой. Кроме того, добавление сиалилированных ОГМ помогло поддерживать нормальное количество незрелых нейронов [25]. Позднее в исследовании E. Pisa и соавт. (2021 г.) показано незаменимое действие сиалилированных ОГМ и доказано, что дефицит 3’-SL в раннем возрасте приводил к снижению внимания, пространственной и рабочей памяти [26]. Помимо хорошо изученных и задокументированных влияний сиализированных ОГМ на когнитивные функции, их защитные механизмы в настоящее время также вызывают большой интерес. К примеру, 3’-SL ингибирует гиперпроницаемость эндотелия и может быть потенциальным терапевтическим средством для предотвращения прогрессирования атеросклероза [27]. Комбинация 3’-SL и 6’-SL при синдроме острого повреждения легких обладает ингибирующим эффектом на секрецию провоспалительных цитокинов в сыворотке, подавляя экспрессию фактора некроза опухоли α, интерлейкина-1β, тем самым снижая эффекты воспаления [28].

Нейтральные нефукозилированные ОГМ

Важными структурами ОГМ являются 2 важных тетраса- харида — LNT и LNnT. Более полноценно изучены их фукозилированные производные, в основном лакто-N-фукопентаозы (LNFP) I, LNFP II, LNFP III и лакто-N-дифукогексаозы I, каждый из которых составляет 6% (по массе) общего количества ОГМ. Они также известны как DFL, которая обладает сильной антимикробной активностью в отношении различных патогенов, включая Streptococcus группы В, идентифицированный как основная причина неонатального сепсиса [29, 30].

Все приведенные структуры проявляют такие же физиологические характеристики, включая модификацию кишечной микробиоты, иммуномодуляцию и антибактериальную активность, однако данных по этой группе недостаточно [31]. Известно, что помимо Bifidobacterium, ассоциированных с кишечником младенцев, описаны пути ассимиляции ОГМ для ряда кишечных микробов, принадлежащих к другим таксонам. Показано, что многочисленные виды Bacteroides метаболизируют 2’-FL и 3’-FL, 3’-SL и 6’-SL, LNFP, в то время как Lactobacillus casei используют производные LNТ и лакто-N-триозу II. Фактически специфическая фосфотрансферазная система для импорта LNТ идентифицирована у видов Lactobacillus [32]. Хотя способность этих кишечных микробов потреблять ОГМ, как правило, весьма ограничена, приведенные второстепенные виды играют важную роль в формировании кишечного микробиома младенцев, находящихся на ГВ, и потенциально могут влиять на популяцию микробиоты во взрослом возрасте [33].

ОГМ в детских молочных смесях

В настоящее время около 40% детей находятся исключительно на ГВ в течение первых 6 мес, тогда как остальные получают докорм в виде детских смесей или полностью на-ходятся на ИВ.

На протяжении долгого времени продукты для детского питания разрабатывали с учетом питательного состава человеческого ГМ. Что же касается ОГМ, то до 2016 г. они были недоступны в качестве ингредиентов для детских смесей. Учитывая их важную роль в формировании детского организма, в 80-х годах прошлого века созданы пребиотики (галактоолигосахариды — ГОС, фруктоолигосахариды — ФОС), которые, как предполагалось, способны селективно стимулировать рост Bifidobacterium и, возможно, влиять на иммунные функции, выступая аналогами ОГМ, но уже позднее, согласно результатам многочисленных исследований, стало понятно, что и они не смогут полностью повторить функции молочных олигосахаридов [34–36].

ГОС и ФОС имеют простую структуру (ФОС — цепочки фруктозы с молекулой глюкозы на терминальном окончании, ГОС — цепочки галактозы с молекулой глюкозы на терми- нальном окончании), при этом возможность наличия раз- личных пространственных конформаций все равно не делает их аналогичными ОГМ ввиду отсутствия в их составе Fuc, Sia или N-aцетилглюкозамина [37]. Указанные особенности строения влияют на защитные функции. Например, многие бактерии экспрессируют лектины, которые связываются со специфическими гликанами на поверхности эпителиальных клеток хозяина. Данная начальная адгезия необходима для вирулентности большинства патогенных микроорганизмов. Некоторые ОГМ блокируют адгезию патогенов, что защищает ребенка, находящегося на ГВ, от определенных инфекций и диареи [38]. ГОС и ФОС не способны имитировать эти защитные эффекты, поскольку большинство из них не похожи на гликаны поверхности эпителиальных клеток в сравнении с ОГМ, а также они могут стимулировать рост и патогенных микроорганизмов, в частности Clostridium, Streptomyces, Collinsella и др. [39, 40]. Показано, что ГОС может стимулировать Akkermansia, но только 2’-FL способствует росту бактерий, которые могут ее метаболизировать [41–43]. Количество Lactobacillus также значительно увеличивается в микробиоте младенцев, получающих ГОС, но в целом добавление 2’-FL привело к более сложным изменениям микробиоты и более эффективному подавлению потенциальных патобионтов [44]. Отмечено, что 2’-FL формирует более разнообразную микробиоту и запускает профили цитокинов, схожих с эталонными у младенцев на ГВ, чем смесь исключительно с ГОС или лактозой [45, 46]. В этом отношении эффект от добавления ОГМ может быть ближе к эффекту ГМ [47]. Наблюдаемая дифференциальная дозо- зависимая стимуляция 2 подвидов — B. longum и B. infantis, соответственно с 2’-FL, указывает на дополнительные потенциальные преимущества натуральных ОГМ, поскольку оба подвида являются ключевыми представителями здоро- вой микробиоты младенцев, находящихся на ГВ [48].

В исследовании J. Bienenstock и соавт. (2013 г.) дети на ИВ с добавлением 2’-FL и LNnT имели более низкий уровень кислотности, что приводило к повышению общего количества КЦЖК [49]. Кроме того, фукозилированные молекулы 2’-FL и 3’-FL влияли на моторную функцию кишки, в то время как ГОС не вызывали никаких эффектов [50].

Прием ОГМ ассоциировался с дополнительными последствиями для здоровья кишечника, которые могли быть связаны с метаболической активностью бактериальных сообществ, доминирующих в кишечнике, включая повышенное содержание в кале КЦЖК, снижение уровня кислотности кала и модуляцию путей метаболизма [51]. Развитие микробиома в раннем возрасте оказывает сильное влияние как на краткосрочное, так и на долгосрочное здоровье. ОГМ могут помочь благотворно модулировать микробиом и управлять симптомами синдрома раздраженного кишечника. Добавление ОГМ у пациентов с синдромом раздраженного кишечника частично модулировало состав кишечного микробиома и положительно влияло на характеристики стула [52]. Добавки ОГМ также снижали относительную численность специфических бактериальных патогенов. Изменения в микробиоме могут быть связаны и с уменьшением числа инфекций. Младенцы, получавшие добавки с ОГМ, реже страдали от инфекций дыхательных путей [53, 54]. Микробиом также может поддерживать иммунную систему либо путем прямого взаимодействия с иммунными клетками, либо с помощью выработки иммуномодулирующих метаболитов [54, 55]. Интересно, что микробиом младенцев, находящихся на ИВ, становится более похожим на микробиом детей, получающих ГВ, когда в него включены ОГМ [56].

До настоящего времени в состав детских смесей включали не более 2 ОГМ (2’-FL и LNnT). В экспериментальных и клинических исследованиях доказаны их безопасность и эффективность, однако дополнительная польза для здоровья младенцев может возникнуть, если в детское питание будут включены более сложные комбинации ОГМ в соотношениях и концентрациях, близких к тем, которые содержатся в ГМ человека. В ранних исследованиях показано, что употребление смеси, дополненной 5 ОГМ (2’-FL и 3’-FL, LNT, 3’-SL и 6’-SL) с общей концентрацией 5,75 г/л, безопасно и хорошо переносимо [57–59]. Такая смесь поддерживает развитие микробиома в раннем возрасте и приближает его состав к составу микробиома младенцев, находящихся на ГВ. Подтверждено, что подобные добавки ОГМ увеличивают количество фекальных Bifidobacterium, поддерживают их нормальный рост, обеспечивают хорошую переносимость со стороны желудочно-кишечного тракта и могут использоваться у здоровых доношенных детей. Кроме того, анализ микробной метаболической способности выявил функциональные изменения, включая обогащение тирозина и деградацию муцина. Приведенные результаты могут поддержать будущие исследования по раскрытию причинно-следственных связей между микробиомом младенцев, развитием иммунной системы и дол- госрочными последствиями для здоровья [60, 61].

Перспектива современных смесей, обогащенных 5 ОГМ

Известно о благоприятном воздействии ГМ на дисбиотическую кишечную микробиоту у младенцев с особенностями перинатального анамнеза, например маловесных или недоношенных, рожденных путем кесарева сечения, имевших задержку внутриутробного развития, перенесших внутриутробную пневмонию и получавших антибиотики в неонатальном периоде, а также имеющих отягощенный семейный анамнез по риску развития аллергии. В настоящее время такие дети представляют особо уязвимые груп- пы населения. Ранние исследования показывали бифидогенный эффект у таких младенцев, находящихся на ИВ, но в их питании присутствовала смесь с добавлением 2 ОГМ (2’-FL, LNnT) [62, 63]. Учитывая приведенные данные, современные смеси, обогащенные 5 ОГМ, становятся линейкой первого выбора при невозможности ГВ.

На примере смеси компании Nestlé, вышедшей в России как NAN® 0-12 SUPREME, в которой содержатся 5 ОГМ, можно рассмотреть пользу и безопасность подобных детских смесей. Новый уникальный продукт содержит 5 основных ОГМ: 2’-FL, DFL, LNT, 3’-SL, 6’-SL, которые выбраны как оптимальная комбинация, способствующая росту и развитию младенца. Во-первых, одну из ключевых особенностей составляют количество и соотношение ОГМ в смеси, которые максимально точно повторяют количество и соотношение олигосахаридов в ГМ женщины. Все данные о разнообразии получены от матерей доношенных детей во все периоды лактации [64]. Доказано, что при точно выверенных объемах ОГМ в детской смеси наблюдаются своего рода эффект насыщения в микробиоте и изменения в развитии кишечника. Во-вторых, в смеси олигосахариды, структурно идентичные ОГМ и применяемые в статусе пищевых добавок или веществ GRAS* , отвечают всем условиям безопасности и успешно применяются у младенцев [65]. В-третьих, основное и главное преимущество заключается в стимуляции развития кишечной микробиоты у детей, включая более высокое содержание Bifidobacterium, повышение ацетата и лактата, которые являются основными конечными продуктами их катаболизма. В исследовании M. Bosheva и соавт. (2022 г.) численность Bifidobacterium увеличилась в группах детей, получавших смесь, обогащенную 5 ОГМ. Эти группы показали увеличение относительной численности Bifidobacterium в возрасте 6 мес примерно на 45%, что аналогично таковой в группе ГВ, в то время как группа детей, получающих смесь, не обогащенную ОГМ, показала снижение численности Bifidobacterium между 3 и 6 мес жизни [66] (рис. 2). Концентрации ОГМ в группах TG1 и TG2 составили: 0,87 и 1,45 г/л — для 2’-FL, 0,10 и 0,14 г/л — для DFL, 0,29 и 0,48 г/л — для LNT, 0,11 и 0,18 г/л — для 3’-SL, 0,14 и 0,24 г/л — для 6’-SL соответственно.

Рис. 2. Относительная численность Bifidobacterium в группах младенцев, получавших стандартную смесь без ОГМ (CG), смесь с концентрацией 5 ОГМ 1,5 г/л (TG1), смесь с концентрацией 5 ОГМ 2,5 г/л (TG2) [66].

Интересным является еще и то, что B. infantis получает конкурентное преимущество в присутствии ОГМ. Ее относительное содержание было выше в группах детей, получающих смесь с 5 ОГМ (рис. 3).

Рис. 3. Относительная численность B. infantis в группах младенцев, получавших стандартную смесь без ОГМ (CG), смесь с концентрацией 5 ОГМ 1,5 г/л (TG1), смесь с концентрацией 5 ОГМ 2,5 г/л (TG2) [66]

Более низкое содержание токсигенных C. difficile и улучшенный иммунный ответ кишечника в раннем возрасте, с преобладанием высокой концентрации секреторного IgA (sIgA) в кале через 3 мес у детей, получавших NAN® 0-12 SUPREME, показывают повышенную активность ферментов, участвующих в метаболических путях (рис. 4) [66–68].

Рис. 4. Концентрация sIgA в TG1 и TG2 на 53% (р<0,01) и 43% (р<0,05) выше, чем в CG, соответственно, и разница сохранялась через 6 мес для TG2 (р<0,05) [66].

Следовательно, использование обогащенных детских сме- сей с 5 ОГМ в соотношении и концентрации, аналогичных ГМ, весьма перспективно для питания младенцев и под- держки формирования их микробиома, иммунитета, ког- нитивных функций, улучшения их общего здоровья.

Раскрытие интересов: Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Вклад авторов: Авторы декларируют соответствие своего авторства международным критериям ICMJE. Все авторы в равной степени участвовали в подготовке публикации: разработка концепции статьи, получение и анализ фактических данных, написание и редактирование текста статьи, проверка и утверждение текста статьи.

Источник финансирования: Авторы декларируют отсутствие внешнего финансирования для проведения исследования и публикации статьи.

Литература

1. Dinleyici M, Barbieur J, Dinleyici EC, Vandenplas Y. Functional effects of hu- man milk oligosaccharides (HMOs). Gut Microbes. 2023;15(1):2186115. DOI:10.1080/19490976.2023.2186115

2. Reid A. Infant feeding and child health and survival in Derbyshire in the early twen- tieth century. Womens Stud Int Forum. 2017;60:111-9. DOI:10.1016/j.wsif.2016.10.011

3. Kunz C. Historical aspects of human milk oligosaccharides. Adv Nutr. 2012;3(3)430S-9S. DOI:10.3945/an.111.001776

4. Tissier H. Recherches sur la flora intestinale de nourissons (état normal et pathologique). Paris, 1900.

5. Walsh C, Lane JA, van Sinderen D, Hickey RM. Human milk oligosaccharides: shap- ing the infant gut microbiota and supporting health. J Funct Foods. 2020;72:104074. DOI:10.1016/j.jff.2020.104074

6. Cheng YJ, Yeung CY. Recent advance in infant nutrition: human milk oligosaccha- rides. Pediatr Neonatol. 2021;62(4)347-53. DOI:10.1016/j.pedneo.2020.12.013

7. Bode L. Human milk oligosaccharides: every baby needs a sugar mama. Glycobiology. 2012;22(9)1147-62. DOI:10.1093/glycob/cws074

8. Petschacher B, Nidetzky B. Biotechnological production of fucosylated human milk oligosaccharides: Prokaryotic fucosyltransferases and their use in biocat- alytic cascades or whole cell conversion systems. J Biotechnol. 2016;23561-83. DOI:10.1016/j.jbiotec.2016.03.052

9. German JB, Freeman SL, Lebrilla CB, Mills DA. Human milk oligosaccharides: evolution, structures and bioselectivity as substrates for intestinal bacteria. Nestle Nutr Workshop Ser Pediatr Program. 2008;62:205-18; discussion 218-22. DOI:10.1159/000146322

10. Chen X. Human Milk Oligosaccharides (HMOS): Structure, Function, and Enzyme-Catalyzed Synthesis. Adv Carbohydr Chem Biochem. 2015;72:113-90. DOI:10.1016/bs.accb.2015.08.002

11. Захарова И.Н., Оробинская Я.В., Сугян Н.Г., и др. Олигосахариды грудного моло- ка: что мы знаем о них сегодня? Педиатрия. Consilium Medicum. 2022;22(3):204-12 [Zakharova IN, Orobinskaia IaV, Sugian NG, et al. Breast milk oligosaccharides: what do we know today? Pediatrics. Consilium Medicum. 2022;22(3):204-12 (in Russian)]. DOI:10.26442/26586630.2022.3.201851

12. Corona L, Lussu A, Bosco A, et al. Human Milk Oligosaccharides: A Comprehensive Review towards Metabolomics. Children (Basel). 2021;8(9):804. DOI:10.3390/children8090804

13. Luo Y, Zhang Y, Yang Y, et al. Bifidobacterium infantis and 2’-fucosyllactose sup- plementation in early life may have potential long-term benefits on gut microbiota, intestinal development, and immune function in mice. J Dairy Sci. 2023;106(11)7461-76. DOI:10.3168/jds.2023-23367

14. Triantis V, Bode L, van Neerven RJJ. Immunological Effects of Human Milk Oligosaccharides. Front Pediatr. 2018;6:190. DOI:10.3389/fped.2018.00190

15. Nogacka AM, Cuesta I, Gueimonde M, de Los Reyes-Gavilán CG. 2-Fucosyllactose Metabolism by Bifidobacteria Promotes Lactobacilli Growth in Co-Culture. Microorganisms. 2023;11(11):2659. DOI:10.3390/microorganisms11112659

16. Padilla L, Fricker AD, Luna E, et al. Mechanism of 2’-fucosyllactose degrada- tion by human-associated Akkermansia. J Bacteriol. 2024;206(2):e0033423. DOI:10.1128/jb.00334-23

17. Vandenplas Y, Berger B, Carnielli VP, et al. Human Milk Oligosaccharides: 2’-Fucosyllactose (2’-FL) and Lacto-N-Neotetraose (LNnT) in Infant Formula. Nutrients. 2018;10(9):1161. DOI:10.3390/nu10091161

18. Zhang S, Chen L, Hu M, Zhu J. 2’-Fucosyllactose (2’-FL) changes infants gut mi- crobiota composition and their metabolism in a host-free human colonic model. Food Res Int. 2023;173(Pt. 1):113293. DOI:10.1016/j.foodres.2023.113293

19. Yu ZT, Nanthakumar NN, Newburg DS. The Human Milk Oligosaccharide 2’-Fucosyllactose Quenches Campylobacter jejuni-Induced Inflammation in Human Epithelial Cells HEp-2 and HT-29 and in Mouse Intestinal Mucosa. J Nutr. 2016;146(10):1980-90. DOI:10.3945/jn.116.230706

20. Li J, Wei Y, Liu C, et al. 2’-Fucosyllactose restores the intestinal mucosal barrier in ulcerative colitis by inhibiting STAT3 palmitoylation and phosphorylation. Clin Nutr. 2024;43(2):380-94. DOI:10.1016/j.clnu.2023.12.011

21. Zhao G, Williams J, Washington MK, et al. 2’-Fucosyllactose Ameliorates Chemotherapy-Induced Intestinal Mucositis by Protecting Intestinal Epithelial Cells Against Apoptosis. Cell Mol Gastroenterol Hepatol. 2022;13(2):441-57. DOI:10.1016/j.jcmgh.2021.09.015

22. Nakano T, Sugawara M, Kawakami H. Sialic acid in human milk: composition and functions. Acta Paediatr Taiwan. 2001;42(1):11-7.

23. Hennet T, Chui D, Paulson JC, Marth JD. Immune regulation by the ST6Gal sialyl- transferase. Proc Natl Acad Sci U S A. 1998;95(8):4504-9. DOI:10.1073/pnas.95.8.4504

24. Clouard C, Reimert I, Fleming SA, et al. Dietary sialylated oligosaccharides in early-life may promote cognitive flexibility during development in con- text of obesogenic dietary intake. Nutr Neurosci. 2022;25(12):2461-78. DOI:10.1080/1028415X.2021.1975877

25. Tarr AJ, Galley JD, Fisher SE, et al. The prebiotics 3’Sialyllactose and 6’Sialyllactose diminish stressor-induced anxiety-like behavior and colonic microbiota alterations: Evidence for effects on the gut-brain axis. Brain Behav Immun. 2015;50:166-77. DOI:10.1016/j.bbi.2015.06.025

26. Pisa E, Martire A, Chiodi V, et al. Exposure to 3’Sialyllactose-Poor Milk during Lactation Impairs Cognitive Capabilities in Adulthood. Nutrients. 2021;13(12):4191. DOI:10.3390/nu13124191

27. Nguyen DV, Jin Y, Nguyen TLL, et al. 3’-Sialyllactose protects against LPS-induced endothelial dysfunction by inhibiting superoxide-mediated ERK1/2/STAT1 activa- tion and HMGB1/RAGE axis. Life Sci. 2024;338:122410. DOI:10.1016/j.lfs.2023.122410

28. Jin Y, Jeon H, Le Lam Nguyen T, et al. Human milk oligosaccharides 3’-si- alyllactose and 6’-sialyllactose attenuate LPS-induced lung injury by inhibit- ing STAT1 and NF-κB signaling pathways. Arch Pharm Res. 2023;46:897-906. DOI:10.1007/s12272-023-01470-1

29. Lee HJ, Shin DJ, Han K, et al. Simultaneous production of 2’-fucosyllactose and difucosyllactose by engineered Escherichia coli with high secretion efficiency. Biotechnol J. 2022;17(3):e2100629. DOI:10.1002/biot.202100629

30. Phipps KR, Baldwin N, Lynch B, et al. Safety evaluation of a mixture of the hu- man-identical milk oligosaccharides 2’-fucosyllactose and difucosyllactose. Food Chem Toxicol. 2018;120:552-65. DOI:10.1016/j.fct.2018.07.054

31. Zhang P, Zhu Y, Li Z, et al. Recent Advances on Lacto-N-neotetraose, a Commercially Added Human Milk Oligosaccharide in Infant Formula. J Agric Food Chem. 2022;70(15):4534-47. DOI:10.1021/acs.jafc.2c01101

32. Bidart GN, Rodríguez-Díaz J, Monedero V, Yebra MJ. A unique gene cluster for the utilization of the mucosal and human milk-associated glycans galacto-N-bi- ose and lacto-N-biose in Lactobacillus casei. Mol Microbiol. 2014;93(3):521-38. DOI:10.1111/mmi.12678

33. Zhang B, Li LQ, Liu F, Wu JY. Human milk oligosaccharides and infant gut microbi- ota: Molecular structures, utilization strategies and immune function. Carbohydr Polym. 2022;276:118738. DOI:10.1016/j.carbpol.2021.118738

34. Kim SY, Yi DY. Components of human breast milk: from macronutrient to microbi- ome and microRNA. Clin Exp Pediatr. 2020;63(8):301-9. DOI:10.3345/cep.2020.00059

35. Fanaro S, Boehm G, Garssen J, et al. Galacto-oligosaccharides and long-chain fructo-oligosaccharides as prebiotics in infant formulas: a review. Acta Paediatr Suppl. 2005;94(449):22-6. DOI:10.1111/j.1651-2227.2005.tb02150.x

36. Davani-Davari D, Negahdaripour M, Karimzadeh I, et al. Prebiotics: Definition, Types, Sources, Mechanisms, and Clinical Applications. Foods. 2019;8(3):92. DOI:10.3390/foods8030092

37. Макарова Е.Г., Нетребенко О.К., Украинцев С.Е. Олигосахариды груд- ного молока: ис тория открытия, с трук т ура и защитные функ- ции. Педиатрия. 2018;97(4):152-60 [Makarova EG, Netrebenko OK, Ukraintsev SE. Breast milk oligosaccharides: the history of discovery, struc- ture and protective functions. Pediatria. 2018;97(4):152-60 (in Russian)]. DOI:10.24110/0031-403X-2018-97-4-152-160

38. Newburg DS, Ruiz-Palacios GM, Morrow AL. Human milk glycans pro- tect infants against enteric pathogens. Annu Rev Nutr. 2005;2537-58. DOI:10.1146/annurev.nutr.25.050304.092553

39. Ninonuevo MR, Bode L. Infant formula oligosaccharides opening the gates (for speculation): commentary on the article by Barrat et al. on page 34. Pediatr Res. 2008;64(1):8-10. DOI:10.1203/PDR.0b013e3181752c2f

40. Dewulf EM, Cani PD, Claus SP, et al. Insight into the prebiotic concept: lessons from an exploratory, double blind intervention study with inulin-type fructans in obese women. Gut. 2013;62(8):1112-21. DOI:10.1136/gutjnl-2012-303304

41. Arnold JW, Roach J, Fabela S, et al. The pleiotropic effects of prebio- tic galacto-oligosaccharides on the aging gut. Microbiome. 2021;9(1):31. DOI:10.1186/s40168-020-00980-0

42. Elison E, Vigsnaes LK, Rindom Krogsgaard L, et al. Oral supplementation of healthy adults with 2’-O-fucosyllactose and lacto-N-neotetraose is well tolerated and shifts the intestinal microbiota. Br J Nutr. 2016;116(8):1356-68. DOI:10.1017/S0007114516003354

43. Milani C, Duranti S, Bottacini F, et al. The First Microbial Colonizers of the Human Gut: Composition, Activities, and Health Implications of the Infant Gut Microbiota. Microbiol Mol Biol Rev. 2017;81(4):e00036-17. DOI:10.1128/MMBR.00036-17

44. Logtenberg MJ, Donners KMH, Vink JCM, et al. Touching the High Complexity of Prebiotic Vivinal Galacto-oligosaccharides Using Porous Graphitic Carbon Ultra- High-Performance Liquid Chromatography Coupled to Mass Spectrometry. J Agric Food Chem. 2020;68(29):7800-8. DOI:10.1021/acs.jafc.0c02684

45. Goehring KC, Marriage BJ, Oliver JS, et al. Similar to Those Who Are Breastfed, Infants Fed a Formula Containing 2’-Fucosyllactose Have Lower Inflammatory Cytokines in a Randomized Controlled Trial. J Nutr. 2016;146(12):2559-66. DOI:10.3945/jn.116.236919

46. Salli K, Anglenius H, Hirvonen J, et al. The effect of 2’-fucosyllactose on simulat- ed infant gut microbiome and metabolites; a pilot study in comparison to GOS and lactose. Sci Rep. 2019;9(1):13232. DOI:10.1038/s41598-019-49497-z

47. Roger LC, Costabile A, Holland DT, et al. Examination of faecal Bifidobacterium populations in breast- and formula-fed infants during the first 18 months of life. Microbiology (Reading). 2010;156(Pt. 11):3329-41. DOI:10.1099/mic.0.043224-0

48. Lindner C, Looijesteijn E, Dijck HV, et al. Infant Fecal Fermentations with Galacto- Oligosaccharides and 2’-Fucosyllactose Show Differential Bifidobacterium longum Stimulation at Subspecies Level. Children (Basel). 2023;10(3):430. DOI:10.3390/children10030430

49. Vester Boler BM, Rossoni Serao MC, Faber TA, et al. In vitro fermentation charac- teristics of select nondigestible oligosaccharides by infant fecal inocula. J Agric Food Chem. 2013;61(9):2109-19. DOI:10.1021/jf305056f

50. Bienenstock J, Buck RH, Linke H, et al. Fucosylated but not sialylated milk oli- gosaccharides diminish colon motor contractions. PLoS One. 2013;8(10):e76236. DOI:10.1371/journal.pone.0076236

51. Stewart CJ. 2022 Fleming Prize Lecture: diet-microbe-host interaction in early life. J Med Microbiol. 2023;72(4). DOI:10.1099/jmm.0.00166

52. Sanz Morales P, Wijeyesekera A, Robertson MD, et al. The Potential Role of Human Milk Oligosaccharides in Irritable Bowel Syndrome. Microorganisms. 2022;10(12):2338. DOI:10.3390/microorganisms10122338

53. Puccio G, Alliet P, Cajozzo C, et al. Effects of Infant Formula With Human Milk Oligosaccharides on Growth and Morbidity: A Randomized Multicenter Trial. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2017;64(4):624-31. DOI:10.1097/MPG.0000000000001520

54. Martin FP, Tytgat HLP, Krogh Pedersen H, et al. Host-microbial co-metabolites modulated by human milk oligosaccharides relate to reduced risk of respiratory tract infections. Front Nutr. 2022;9:935711. DOI:10.3389/fnut.2022.935711

55. Zuurveld M, Ayechu-Muruzabal V, Folkerts G, et al. Specific Human Milk Oligosaccharides Differentially Promote Th1 and Regulatory Responses in a CpG-Activated Epithelial/Immune Cell Coculture. Biomolecules. 2023;13(2):263. DOI:10.3390/biom13020263

56. Wallingford JC, Neve Myers P, Barber CM. Effects of addition of 2-fucosyllactose to infant formula on growth and specific pathways of utilization by Bifidobacterium in healthy term infants. Front Nutr. 2022;9:961526. DOI:10.3389/fnut.2022.961526

57. Нетребенко О.К., Украинцев С.Е., Дубровская М.И. Современные концепции разработки и создания детских молочных смесей: вчера, сегодня, завтра. Педиатрия. 2019;98(1):201-9 [Netrebenko OK, Ukraintsev SE, Dubrovskaya MI. Modern concepts of development and creation of infant for- mula: yesterday, today, tomorrow. Pediatria. 2019;98(1):201-9 (in Russian)]. DOI:10.24110/0031-403X-2019-98-1-201-209

58. Conze DB, Kruger CL, Symonds JM, et al. Weighted analysis of 2’-fucosyl- lactose, 3-fucosyllactose, lacto-N-tetraose, 3’-sialyllactose, and 6’-sialyl- lactose concentrations in human milk. Food Chem Toxicol. 2022;163:112877. DOI:10.1016/j.fct.2022.112877

59. Parschat K, Melsaether C, Jäpelt KR, Jennewein S. Clinical Evaluation of 16- Week Supplementation with 5HMO-Mix in Healthy-Term Human Infants to Determine Tolerability, Safety, and Effect on Growth. Nutrients. 2021;13(8):2871. DOI:10.3390/nu13082871

60. Holst AQ, Myers P, Rodríguez-García P, et al. Infant Formula Supplemented with Five Human Milk Oligosaccharides Shifts the Fecal Microbiome of Formula-Fed Infants Closer to That of Breastfed Infants. Nutrients. 2023;15(14):3087. DOI:10.3390/nu15143087

61. Lasekan J, Choe Y, Dvoretskiy S, et al. Growth and Gastrointestinal Tolerance in Healthy Term Infants Fed Milk-Based Infant Formula Supplemented with Five Human Milk Oligosaccharides (HMOs): A Randomized Multicenter Trial. Nutrients. 2022;14(13):2625. DOI:10.3390/nu14132625

62. Özcan E, Sela DA. Inefficient Metabolism of the Human Milk Oligosaccharides Lacto-N-tetraose and Lacto-N-neotetraose Shifts Bifidobacterium longum sub- sp. infantis Physiology. Front Nutr. 2018;5:46. DOI:10.3389/fnut.2018.00046

63. Koletzko S, Niggemann B, Arato A, et al. Diagnostic approach and man- agement of cow’s-milk protein allergy in infants and children: ESPGHAN GI Committee practical guidelines. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2012;55(2):221-9. DOI:10.1097/MPG.0b013e31825c9482

64. Austin S, De Castro CA, Sprenger N, et al. Human Milk Oligosaccharides in the Milk of Mothers Delivering Term versus Preterm Infants. Nutrients. 2019;11(6):1282. DOI:10.3390/nu11061282

65. Salminen S, Collado MC, Endo A, et al. The International Scientific Association of Probiotics and Prebiotics (ISAPP) consensus statement on the definition and scope of postbiotics. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2021;18(9):649-67. DOI:10.1038/s41575-021-00440-6

66. Bosheva M, Tokodi I, Krasnow A, et al. Infant Formula With a Specific Blend of Five Human Milk Oligosaccharides Drives the Gut Microbiota Development and Improves Gut Maturation Markers: A Randomized Controlled Trial. Front Nutr. 2022;9:920362. DOI:10.3389/fnut.2022.920362

67. Laursen MF, Sakanaka M, von Burg N, et al. Bifidobacterium species associated with breastfeeding produce aromatic lactic acids in the infant gut. Nat Microbiol. 2021;6(11):1367-82. DOI:10.1038/s41564-021-00970-4

68. Kim JH, An HJ, Garrido D, et al. Proteomic analysis of Bifidobacterium longum sub- sp. infantis reveals the metabolic insight on consumption of prebiotics and host glycans. PLoS One. 2013;8(2):e57535. DOI:10.1371/journal.pone.0057535

Вам понравился этот
материал?
Вам понравился этот материал?
Почему этот материал не понравился?

Подбирать вам больше
материалов по этой теме?
Пожалуйста, зарегистрируйтесь или авторизуйтесь, чтобы получать больше материалов по этой теме доступ к материалам сайта.
НОВЫЙ
ЭКСКЛЮЗИВ!
Диалог экспертов
Новика Г.А. и Макаровой С.Г.