Полный доступ для зарегистрированных пользователей
А.В.Шайтарова1, О.С.Доготарь2
1Тюменский государственный медицинский университет, Тюмень, Российская Федерация;
2ООО «Нестле Россия», Москва, Российская Федерация
Контактная информация:
Шайтарова Анна Владимировна, кандидат медицинских наук, доцент, доцент кафедры педиатрии и неонатологии Тюменского государственного медициского университета
Адрес: Россия, 625023, г. Тюмень, ул. Одесская, 5
Тел.: (345) 279-6844, E-mail: shaytarovaav@tyumsmu.ru
Статья поступила 16.05.2024, принята к печати 28.06.2024
В последние годы значительно возрос интерес к олигосахаридам грудного молока (ОГМ) из-за их положительного влияния на различные аспекты здоровья детей. Известно, что ОГМ принимают участие во множестве физиологических функций, включая создание и поддержание здорового микробиома кишечника, развитие иммунной системы и модуляцию воспалительных реакций, укрепление желудочно-кишечного барьера и стимулирование развития нейронов и когнитивных функций. Понимание механизмов функциональных эффектов ОГМ может лежать в основе профилактики различных заболеваний и состояний у детей и взрослых.
Грудное вскармливание (ГВ) является наиболее эффективным способом поддержания и программирования здоровья ребенка, поскольку грудное молоко (ГМ) содержит широкий спектр не только питательных, но и биологически активных компонентов, оказывающих влияние на рост и развитие младенцев и детей раннего возраста [1]. Всемирная организация здравоохранения рекомендует исключительно ГВ с первого часа после рождения до 6-месячного возраста и его продолжение после введения прикорма. По данным Федеральной службы государственной статистики, количество детей, находившихся на ГВ в возрасте от 3 до 6 мес., в России (в процентах от числа детей, достигших в отчетном году 1 года) составило 41,2% в 2012 г. и 44,5% в 2022 г., от 6 до 12 мес. — 40,6% в 2012 г. и 37,6% в 2022 г. [2]. Хотя использование современных адаптированных детских смесей является безопасной альтернативой ГВ, они не способны в полной мере заменить биологически активные компоненты ГМ. Несмотря на многочисленные результаты исследований, у нас все еще ограничено понимание того, какие компоненты ГМ влияют на фундаментальные аспекты здоровья детей, включая рост и развитие. Чтобы воспроизвести преимущества ГМ, необходимо разработать продукты для детского питания, содержащие ингредиенты, максимально соответствующие биоактивным компонентам ГМ человека по качеству и эффектам. Биологически активные компоненты ГМ определяются как компоненты, которые «влияют на биологические процессы или среды и, следовательно, оказывают влияние на функцию или состояние организма и, в конечном итоге, на здоровье» [3]. В настоящее время повышенный научно-практический интерес вызывает изучение таких биологически активных компонентов ГМ, как лактоферрин, факторы роста, гормоны, нуклеотиды, олигосахариды грудного молока (ОГМ), иммуноглобулины и цитокины [4], ввиду их позитивного воздействия на микробиом, рост и развитие детей, а также на иммунную функцию [5]. Особый интерес представляют ОГМ в связи с их комплексным положительным влиянием на развитие многих систем организма младенцев (рис. 1), что позволяет рассматривать включение ОГМ в продукты детского питания как эффективную профилактическую стратегию. ОГМ являются третьим по распространенности компонентом сухого остатка ГМ и представляют собой относительно сложные углеводы, которые не перевариваются в желудочно-кишечном тракте (ЖКТ) ребенка, но служат предпочтительным пищевым субстратом для комменсальных бактерий в кишечнике [6], оказывая тем самым благоприятное влияние на состав микробиоты, что выражается в доминировании полезных штаммов бифидобактерий и подавлении патогенов.
Рис 1. Функции олигосахаридов грудного молока (ОГМ)
1. Служат пребиотиками, стимулируя рост комменсальных бактерий, придавая им избирательное преимущество перед патогенами и обеспечивая дополнительную защиту от инфекционных заболеваний. ОГМ служат рецепторами-ловушками для предотвращения адгезии патогенов к слизистой оболочке, снижая риск вирусных и бактериальных инфекций. КЦЖК, образующиеся в процессе ферментации ОГМ, укрепляют целостность эпителиального барьера и способны влиять на иммунные реакции.
2. ОГМ укрепляют кишечный барьер, модулируя экспрессию белков плотных контактов, тем самым снижая проницаемость кишечного барьера.
3. ОГМ непосредственно влияют на иммунную функцию посредством модуляции ДК.
4. Действуют на системном уровне, модулируя взаимодействия между иммунными клетками
Рис 2. Влияние ОГМ на здоровье младенцев, получающих грудное вскармливание.
ОГМ также могут выполнять ряд других полезных физиологических функций, влияя на развитие иммунной системы и модуляцию воспалительных реакций, укрепление желудочно-кишечного барьера и стимулирование развития нейронов и когнитивных функций детей раннего возраста [7]. Более того, ОГМ в неизмененном виде обнаружены в системном кровотоке и моче младенцев, где могут оказывать системное защитное и иммуномодулирующее воздействие [8] (рис. 2). К настоящему времени расшифрована структура >200 различных ОГМ, которые можно разделить на 3 класса: нейтральные фукозилированные, нейтральные нефукозилированные и кислые, или сиалилированные. В ГМ содержатся не все олигосахариды — обычно они представлены набором из 15–20 индивидуальных олигосахаридов [6]. Состав и концентрация ОГМ варьируют у разных матерей и отличаются в зависимости от разных факторов [9]. Наиболее влиятельным предиктором состава ОГМ является так называемый секреторный статус конкретной женщины, который определяется полиморфизмом гена фукозилтрансферазы 2 (FUT2), влияющим на способность синтезировать олигосахариды определенной структуры [10]. Генетически профиль ОГМ можно разделить на 4 группы по экспрессии генов групп крови секретора (Se) и Льюиса (Le), ответственных за активацию двух ферментов, участвующих в синтезе фукозилированных ОГМ: α1-2-фукозилтрансферазы (FUT2), кодируемой геном Se, и α1-3/4-фукозилтрансферазы (FUT3), кодируемой геном Le, влияющих на различные паттерны фукозилирования гликанов [11].
Хотя негенетические факторы, влияющие на состав ОГМ, остаются в значительной степени неоднозначными, некоторые исследования позволяют предположить, что состав ОГМ может быть связан со стадией лактации, рационом питания матери, индексом массы тела (ИМТ) и возрастом матери, факторами окружающей среды и даже географическим регионом проживания женщины [12]. Нейтральные нефукозилированные ОГМ составляют от 35 до 50%, нейтральные фукозилированные — 42–50%, кислые сиалилированные — 12–14% в структуре ОГМ. [13]. Женщины с «Se+»- статусом составляют 70–90% всех женщин и способны синтезировать в ГМ α(1,2)-фукозилированные ОГМ, например такие, как 2’FL и LNFP I (лакто-N-фукопентаоза I). 2’FL является наиболее распространенным ОГМ, обнаруженным в молоке женщин «Se+», его концентрация варьирует от 1,28 до 4,13 г/л в зависимости от периода лактации, с максимально высокими концентрациями в молозиве. Наиболее распространенной α1-3/4-фукозилированной формой ОГМ является 3-фукозиллактоза (3’FL), концентрация которой варьирует от 0,06 до 2,4 г/л. 3’FL представляет собой наиболее распространенный нейтральный фукозилированный ОГМ в ГМ женщин с генетическим статусом «Se-». Наиболее распространенными сиалилированными ОГМ являются 3’-сиалиллактоза (3’SL) и 6’-сиалиллактоза (6’SL) с диапазонами концентраций 0,09–0,35 г/л и 0,06–1,3 г/л соответ- ственно. Среди нефукозилированных нейтральных ОГМ лакто-N-тетраоза (LNT) является наиболее распространенной формой с диапазоном концентраций от 0,2 до 1,7 г/л. Эти данные были собраны путем сравнения концентраций ОГМ в ГМ матерей, родивших доношенных детей [14]. Доказано, что функции ОГМ зависят от структуры каждой конкретной формы олигосахарида. Например, известно, что сиалилированные ОГМ и 2’-фукозилактоза (2’FL) оказывают влияние на развитие мозга и способность к обучению [15]. Благодаря особенностям своего строения представители разных классов ОГМ обладают способностью связываться с рецепторами на поверхности патогенных бактерий и вирусов, действуя как своеобразные «ловушки». Таким образом, ОГМ способны предотвращать адгезию многих патогенных вирусов или бактерий к рецепторам клеток [16]. Ниже мы детально остановимся на основных функциях ОГМ в контексте темы обзора.
Развитие кишечной микробиоты (КМБ) детей представляет собой последовательный процесс, который начинается внутриутробно, длится примерно до трехлетнего возраста ребенка [17] и зависит от многих факторов, таких как способ родоразрешения, гестационный возраст, характер вскармливания ребенка, использование антибактериальных препаратов, генетика [18, 19]. Кишечник новорожденных первыми колонизируют факультативные анаэробы, такие как Escherichia coli и Streptococcus spp., которые создают оптимальную среду для последующей колонизации облигатными анаэробами (Bacteroides spp., Bifidobacterium spp. и Clostridium spp.) [20]. При этом дети, родившиеся через естественные родовые пути, имеют КМБ, напоминающую вагинальную микробиоту матери, где преобладают Lactobacillus, Prevotella, в то время как у детей, рожденных путем операции кесарева сечения, состав КМБ сходен с микробиотой кожи матери, где преобладают Staphylococcus, Corynebacterium и Propionibacterium spp. [21]. Бифидобактерии колонизируют кишечник в течение первых нескольких дней после родов и в дальнейшем составляют ~90% состава КМБ у детей на ГВ [22]. Популяция бифидобактерий в кишечнике ребенка состоит из нескольких штаммов бифидобактерий. В первые 1–2 года жизни ребенка состав КМБ здоровых детей на ГВ обычно отличается относительно низким микробным разнообразием при одновременно высоком относительном содержании бифидобактерий «младенческого» типа, включая Bifidobacterium longum subsp. infantis, B. bifidum, B. breve и B. longum subsp. longum [23]. У детей на искусственном вскармливании (ИВ) в составе КМБ наблюдается несколько большее разнообразие и более высокая распространенность B. adolescentis, B. catenulatum, Bacteroides, Proteus и Clostridium [21]. Содержание ОГМ в ГМ является одним из важных факторов, определяющих состав КМБ ребенка [18], так как они являются основным пищевым субстратом и избирательно утилизируются кишечными бактериями — преимущественно Bifidobacterium, в гораздо меньшей степени некоторыми видами Bacteroides и Lactobacillus (L. casei). Бифидобактерии обладают набором генов, кодирующих синтез специфических ферментов, необходимых для ферментации ОГМ вне клетки (внеклеточная стратегия ферментации) и внутри бактериальной клетки (внутриклеточная стратегия ферментации) [21]. При использовании стратегии внеклеточной ферментации ОГМ подвергаются гидролизу до моно- или дисахаридов с помощью гликозилгидролаз (гликозидаз), связанных с клеточной стенкой, и уже гидролизованные сахара транспортируются в клетки для дальнейшего использования в цитоплазме. При использовании стратегии внутриклеточного переваривания ОГМ транспортируются в клетки с помощью АТФ-связывающих белков семейства АВС (ATP-binding cassette transporters), а затем гидролизуются гликозидазами в цитоплазме до моносахаров.
B. infantis является самым активным представителем бифидобактерий, утилизирующих ОГМ, и использует механизм внутриклеточной ферментации. Целые молекулы ОГМ транспортируются в цитоплазму с помощью специальных белков, а затем метаболизируются внутриклеточно. Внутриклеточные гидролазы участвуют в процессе ферментативного расщепления ОГМ, высвобождающего моносахариды в клетках. B. infantis секретируют широкий диапазон гидролаз: α-сиалидазу, α-фукозидазу, β-галактозидазы и β-N-ацетилгексозаминидазы, что позволяет ферментировать почти все ОГМ, включая 3’SL, 6’SL, 2’FL, 3’FL, LNnT. B. bifidum ферментирует ОГМ посредством внеклеточного гликозидаззависимого молекулярного механизма, используя различные внеклеточные гидролазы, обладающие высокой активностью, аналогичной эндогенным гидролазам B. infantis. B. breve — один из доминирующих представителей бифидобактерий в кишечнике детей первых лет жизни, причем различные штаммы обладают различной способностью к ферментации ОГМ в зависимости от типа гидролаз и могут ферментировать как фукозилированные (2′FL, LNFP I, LNFP III), так и сиалилированные ОГМ, поскольку имеет гены, кодирующие синтез соответствующих ферментов. Большинство штаммов B. longum ферментируют как фукозилированные ОГМ (2’FL, 3’FL, LDFT (DFL)), так и сиалилированные (3’SL, 6’SL). Аналогичным образом, определенный вид или штамм Bifidobacterium может обладать различными возможностями использования определенных типов ОГМ [21]. Разнообразие Bifidobacterium в кишечнике ребенка тесно связано с тем, является ли мать секретором фермента FUT2, то есть присутствуют ли в ГМ олигосахариды определенного строения. Было показано, что стул детей с микробиотой, обладающей способностью утилизировать 2’FL, имеет более низкий уровень рН и характеризуется преобладанием Bifidobacterium. И наоборот, КМБ детей, рожденных от матерей, в ГМ которых ОГМ 2’FL отсутствовали либо содержались в низкой концентрации, характеризуется преобладанием клостридий и энтеробактерий, эти дети имеют более высокий риск диареи, вызванной Campylobacter. В процессе ферментации ОГМ бактериями образуются корот коцепочечные жирные кислоты (КЦЖК), создающие среду с более низким уровнем рН в толстой кишке, что стимулирует рост полезных бактерий и подавляет патогены. КЦЖК обладают множеством полезных физиологических эффектов: оказывают противовоспалительное действие, служат энергетическим субстратом для эпителиальных клеток кишечника, способствуют нормализации моторики ЖКТ. В то же время продукты ферментации бифидобактерий «младенческого» типа, ферментирующих ОГМ, могут подавлять рост условно-патогенных микроорганизмов, которые не используют ОГМ. Это конкурентное преимущество в использовании ОГМ в ЖКТ значительно влияет на выживание и персистенцию полезных видов бифидобактерий и уменьшает количество потенциально вредных или патогенных микроорганизмов. В рандомизированном контролируемом двойном слепом многоцентровом клиническом исследовании, опубликованном в 2020 г., было обнаружено, что у детей после трехмесячного приема детской молочной смеси с двумя ОГМ (основная группа) — 2’FL и LNnT (1,0 г/л 2’FL и 0,5 г/л LNnT) — значительно увеличилось количество бифидобактерий и уменьшилось количество Escherichia и неклассифици- рованных Peptostreptococcaceae (исследование с помощью секвенирования гена 16S рРНК), состав КМБ приближался к составу микробиоты у детей на ГВ и отличался от КМБ у детей контрольной группы, получавших детскую молочную смесь без ОГМ.
Добавление ОГМ привело к тому, что профиль микробиоты, наблюдаемый у детей, родившихся путем кесарева сечения, приблизился к профилю, наблюдаемому у детей контрольной группы, родившихся естественным путем, что говорит о положительном влиянии ОГМ на состав КМБ у детей, рожденных оперативным путем [24]. В течение многих лет было трудно выделить или синтезировать олигосахариды из ГМ с определенной молекулярной структурой и использовать эти олигосахариды в детских молочных смесях у детей на ИВ. Вместо этого в некоторых детских молочных смесях использовались альтернативные пребиотические олигосахариды, такие как галактоолигосахариды (ГОС) и фруктоолигосахариды (ФОС), которые были призваны «имитировать» некоторые функции ОГМ. Однако исследования последних лет демонстрируют, что ГОС/ФОС не могут повторить пребиотические эффекты или биологические функции ОГМ [25]. Маловероятно, что ГОС, ФОС или другие олигосахариды, структура которых отличается от ОГМ, могут имитировать их структурно-специфические эффекты [21].
Многие вирусы и бактерии должны взаимодействовать с рецепторами эпителиальных клеток для реализации своего патогенного потенциала. ОГМ напоминают некоторые структуры этих рецепторов и могут выступать в качестве «точек прикрепления» для патогенов, имитируя рецепторы на поверхности эпителиальных клеток. Таким образом, патогены уже не способны прикрепляться к поверхности клеток и выводятся из организма, что значимо снижает риск развития того или иного заболевания [26]. ОГМ, по-видимому, не только сами выступают в качестве аналогов рецепторов, но также могут изменять экспрессию гликанов [17]. Было показано, что в культуре клеток Caco-2 клетки эпителия изменяют свой поверхностный гликановый профиль после воздействия 3’SL, следовательно, возможно, что этот конкретный ОГМ изменяет содержание гликанов на поверхности эпителиальных клеток, уменьшая таким образом способность некоторых патогенов к адгезии. Список патогенов, в отношении которых ОГМ способны оказывать блокирующее действие, очень широк, и зависит от структурных особенностей конкретных ОГМ. 2’FL способна блокировать Campylobacter jejuni, Enteropathogenic E. coli, Salmonella enterica, Rotavirus, Norovirus, Human respiratory syncytial virus; 3’FL — Enteropathogenic E. coli, S. enterica, Norovirus; LNT — Vibrio cholerae, Group B streptococcus (GBS), Entamoeba histolytica; 3’SL — Enteropathogenic E. coli, Vibrio cholerae, Helicobacter pylori, Pseudomonas aeruginosa, Rotavirus, Influenzavirus; 6’SL — Enteropathogenic E. coli,H. pylori, P. aeruginosa, Influenza A H1N1, Rotavirus; LNnT — Pneumococci, Influenzavirus [27]. ОГМ демонстрируют высокую эффективность в блокировке рецепторовлектинов, которые обуславливают вирулентность P. aeruginosa. Экспериментальные исследования показали, что 2’FL ослабляет инвазию C. jejuni на 80% и уменьшает число эпизодов диареи, связанных с данным патогеном [17]. E.Jantscher- Krenn et al. в ходе исследований in vitro продемонстрировали, что ОГМ снижают адгезию и цитотоксичность E. histolytica к эпителиальным клеткам кишечника [28]. Сиалилированные ОГМ (3’SL и 6’SL) вызывают снижение уровня инфицирования гриппом в исследованиях клеточных культур [17]. 3’FL и 2’FL способны связывать норовирус [29]. В концентрации 0,5 г/л ОГМ значительно снижают связывание гликопротеина gp120 вируса иммунодефицита человека (ВИЧ-1) со специфичными для дендритных клеток рецепторами (DC-SIGN) более чем на 80% [30] и тем самым могут предотвращать захват и последующую передачу ВИЧ-1 CD4 + Т-лимфоцитам [31]. ОГМ обладают бактериостатическим действием в отношении стрептококков группы B (GBS), вызывающих неонатальный сепсис, пневмонию и менингит [32]. В экспериментальных работах показана способность LNT и LNDFH-I задерживать рост GBS на 96–98% [33]. ОГМ продемонстрировали антибактериальное действие в отношении Acinetobacter baumannii и Staphylococcus aureus [34]. У новорожденных ОГМ изменяют рост и морфогенез Candida albicans, что затрудняет прикрепление, инвазию и развитие заболевания [35].
Кишечный эпителий считается первой линией защиты, действуя как физический барьер, ограничивающий распространение инфекции между просветом кишечника и системой кровообращения. Исследования in vitro с использованием культур HT-29, Caco-2 или других клеточных линий кишечника обычно используются для понимания механизмов, посредством которых питательные вещества и микробные метаболиты влияют на целостность эпителия. Исследователи продемонстрировали, что ОГМ способствуют увеличению экспрессии белков плотных контактов и усиливают дифференцировку вдоль оси ворсинка—крипта. С использованием клеток HT-29 и Caco-2 H.D.Holscher et al. оценили эффекты влияния LNnT, 2’FL на кишечный эпителий. Результаты показали, что 2’FL значительно увеличивает дифференцировку в клетках HT-29, а LNnT снижает проницаемость эпителиального барьера [36]. В 2017 г. было продемонстрировано, что 2’FL, 3’FL и 6’SL отдельно или в комбинации могут увеличивать дифференцировку кишечных эпителиальных клеток HT-29 и Caco-2Be и способствовать созреванию кишечного эпителия [37]. В исследовании 2019 г. было выявлено, что 2’FL снижает прогрессирование колита в экспериментальном исследовании на модели мышей с нулевым содержанием интерлейкина-10 (IL-10). Проницаемость кишечника определяли путем измерения уровней декстрана FITC в сыворотке крови, и было показано, что добавление 2’FL значительно повышает целостность эпителия [38]. Эти эффекты были также связаны с изменением состава КМБ, повышением численности комменсальных бактерий и повышенным уровнем пропионата в кишечнике. Это означает, что, стимулируя рост полезных бактерий в дополнение к стимулирующему влиянию на состоятель- ность эпителиального барьера кишечника, ОГМ способны модулировать состояние эпителиального барьера, создавая оптимальный баланс КЦЖК [39]. ОГМ также оказывают положительное влияние на экспрессию гликопротеидов муцина в слизистом барьере. Изменение, сужение этого слоя слизи ассоциируется с повышенной проницаемостью кишечника и повышением риска некоторых заболеваний, таких как некротизирующий энтероколит (НЭК) [40]. Было показано, что ОГМ повышают экспрессию MUC2 и снижают проницаемость кишечника в неонатальной экспериментальной модели НЭК (Wu et al., 2019). ОГМ индуцируют экспрессию муцинов посредством прямого воздействия на белки- шапероны, которые способствуют восстановлению структуры [41]. В исследовании in vitro [42] были изучены эффекты ОГМ на экспрессию генов секреции бокаловидных клеток в модели колоректальных клеток: 2’FL усиливал экспрессию MUC2 во время воздействия IL-13, в то время как 3’FL регулировал экспрессию генов как MUC2, так и TFF3 (Trefoil factor 3) во время воздействия фактора некроза опухоли-α (TNF-α) и IL-13, т.е. во время воздействия воспалительных стрессоров, что приводит к усилению защиты слизистой оболочки, сгущению слизи и увеличению скорости заживления эпителия [39]. Таким образом, результаты исследований in vitro, ex vivo и in vivo свидетельствуют о том, что ОГМ положительно влияют на барьерную функцию кишечника, способны предотвратить дисфункцию кишечника и некроз за счет улучшения экспрессии белков плотных контактов, компонентов гликокаликса и муцинов.
После рождения иммунная система новорожденного подвергается быстрому развитию. При рождении у доношенных новорожденных наблюдается дисбаланс между Th1/17 и Th2 в популяциях Тхелперных клеток. Иммунная система новорожденного в большей степени ориентирована на фенотип Th2, который отвечает за производство IgE и обеспечивает защиту от внеклеточных патогенов. С другой стороны, пути Th1/Th17 нацелены на внутриклеточные патогены, но менее развиты у новорожденного. Незрелая иммунная система также характеризуется избыточной экспрессией маркеров воспаления и неадекватной обратной регуляцией передачи иммунных сигналов [39]. Предполагается, что ОГМ благоприятно модулируют врожденные иммунные реакции новорожденных, контролируя экспрессию маркеров воспаления, влияя на работу цитокинов и хемокинов, которые регулируют баланс Th1/Th2-лимфоцитов [43]. ОГМ могут модулировать иммунный ответ новорожденных косвенно, изменяя состав КМБ и ее метаболитов, а также напрямую, влияя на реакции эпителия и иммунных клеток в кишечнике или системный иммунный ответ [21]. В то время как подавляющее большинство ОГМ попадает непереваренными в толстую кишку, небольшая часть всасывается в неизмененном виде и выводится с мочой. Присутствие интактных ОГМ в моче детей, находящихся на ГВ, было впервые описано в 1996 г. S.Rudloff et al. [44] с последующими клиническими исследованиями, доказывающими всасывание 1–5% ОГМ из ЖКТ в кровеносную систему [45]. Эти результаты свидетельствуют о том, что в дополнение к их роли в просвете кишечника ребенка ОГМ могут оказывать системное действие на различные органы и ткани. Исследования показали, что ОГМ модулируют межклеточные взаимодействия иммунной системы, тем самым способствуя поддержанию сбалансированных воспалительных клеточных реакций [7]. Эта передача сигналов ОГМ опосредуется молекулами рецепторов, которые экспрессируются преимущественно на поверхности иммунных клеток [8]. В литературе описано несколько классов лектинов и Toll-подобных рецепторов (TLR), обладающих специфичностью связывания с ОГМ. Например, Y.He et al. оценили воздействие ОГМ молозива на неповрежденную незрелую слизистую оболочку кишечника человека [46]. Авторы обнаружили, что ОГМ снижают уровни провоспалительных цитокинов (IL-1β, IL-6 и IL-8), одно временно стимулируя экспрессию цитокинов, связанных с восстановлением тканей и гомеостазом. Авторы также обнаружили, что воздействие ОГМ повышает экспрессию поляризации Th1 и смещает баланс цитокинов Th1/Th2. ОГМ также стимулируют дендритные клетки, полученные из моноцитов человека, что связано с повышенными уровнями противовоспалительных цитокинов (IL-10 и IL-20) [47]. Было также обнаружено, что ОГМ снижают индуцированную LPS продукцию провоспалительных цитокинов, таких как IL-12p70 и TNF-α, предотвращая взаимодействие LPS и TLR4 [47]. W.Zhang et al. показали, что нейтральная фракция ОГМ влияет на воспалительные процессы популяции клеток через ядерный фактор (NF)-κB и митогенактивируемые протеинкиназные пути [48]. Противовоспалительные эффекты 2’FL были продемонстрированы в клетках кишечного эпителия T84 и H4, в которых 2’FL подавляет LPS-инду- цированное воспаление во время инфицирования эпителиальных клеток кишечника (IECs) штаммами E. coli. Присутствие 2’FL снижало экспрессию CD14, фактора, который опосредует взаимодействие LPS и TLR4 [46]. Иммуномодулирующие свойства фукозилированных ОГМ также были продемонстрированы в исследованиях на животных. На мышиной модели 2’FL уменьшает симптомы пищевой аллергии и вызывает значительное увеличение IL10+ CD4+CD25+ Treg-клеток, которые ингибируют аллергический воспалительный ответ [49]. Аналогичные эффекты наблюдались для 6’SL. Эффекты сиалилированных ОГМ являются двунаправленными: исследования демонстрируют стимуляцию как Th1-, так и Th2-ответов на моделях in vitro. В исследовании 2010 г. воздействие сиалилированных ОГМ способствовало выработке интерферона-γ и IL-10, что приводило к смещению иммунного ответа в сторону более сбалансированного профиля Th1/Th2 [50]. Противовоспалительные эффекты 3’SL были подтверждены в ходе исследования клеток Caco-2 in vitro, где воздействие 3’SL приводило к снижению экспрессии IL-8, IL-12 и TNF-α [51]. В рандомизированном контролируемом исследовании сообщалось, что у здоровых доношенных детей, вскармливаемых смесью с добавлением 2’FL, уровни провоспалительных цитокинов снижались так же, как и в контрольной группе, находящейся на ГВ [52].
ГВ оказывает протективный эффект в отношении развития многих заболеваний и состояний у ребенка, например в отношении аллергии, НЭК, сахарного диабета [53]. Одним из компонентов ГМ, влияющим на снижение риска развития этих заболеваний, являются ОГМ. Известно, что исключи- тельно ГВ ассоциируется с уменьшением риска развития бронхиальной астмы, атопического дерматита [53]. Оптимальный для соответствующего возраста состав КМБ обеспечивает иммунологические преимущества, снижая риск развития аллергических заболеваний [19]. Уже более 20 лет известно, что микробиота ЖКТ у детей с аллергией и без нее имеет отличия еще до появления симптомов аллергии [39]. Среди детей с отягощенным семейным анамнезом по аллергии снижение количества бифидобактерий в раннем возрасте связано с более высоким риском развития экзе мы [54]. Интересен факт, что дети, рожденные путем кесарева сечения и имеющие высокий наследственный риск развития аллергии, могут иметь более низкий риск возникновения IgE-ассоциированной экземы к 2 годам при вскарм- ливании ГМ с наличием фукозилированных ОГМ по сравнению с детьми, получающими ГМ без данных ОГМ [31]. Дети, получавшие ГМ с низкой концентрацией LNFP III, были более склонны к развитию аллергии на белок коровьего молока (АБКМ) по сравнению с детьми, получавшими ГМ с высокой концентрацией LNFP III. У детей с АБКМ, рожденных от матерей несекреторов, повышена вероятность развития IgE-опосредованной АБКМ. Более низкие уровни DSLNT и 6’SL в ГМ ассоциированы с более высоким риском развития атопического дерматита [55]. Клиническое наблюдение показало, что состав ОГМ связан с риском развития пищевой сенсибилизации, а именно — более высокие концентрации LNnT, FDSLNH, LNFP II, LNFP I, FLNH ассоциируются с меньшим риском пищевой аллергии [49]. В экспериментальной модели на животных, сенсибилизированных к овальбумину, ОГМ 2’FL и 6’FL стабилизируют тучные клетки, стимулируя экспрессию Т-регуляторных клеток, способствуют выработке IL-10, что приводит к уменьшению симптомов пищевой аллергии [56]. Согласно исследованию T.Bozorgmehr в 2023 г. на животной модели бронхиальной астмы, ОГМ 2’FL и 6’SL способствуют снижению уровня IgE, провоспалительных цитокинов, а также изменяют состав КМБ, способствуя оптимальной выработке КЦЖК, особенно пропионата, что ведет к уменьшению воспаления [57].
НЭК развивается у 5–10% недоношенных детей с очень низкой массой тела при рождении, при этом смертность детей с этой патологией может составлять от 10 до 50% [58]. Патогенез НЭК сложен и может быть связан с дисфункцией кишечного барьера, избыточным воспалением, нарушением состава КМБ, нарушением иммунной регуляции, гипоксически-ишемическим повреждением кишечника [59]. TLR4 на клетках кишечного эпителия и иммунных клетках является сигнальным рецептором, участвующим в развитии НЭК. Его активация приводит к нарушениям гомеостаза, воспалению и повреждению тканей. Из-за сходства в структуре между 2’FL/6’FL и LPS они могут конкурентно связываться с TLR4, что снижает функциональную активацию TLR4. Таким образом, путь TLR4/NF-κB не активируется, так что экспрессия воспалительных цитокинов (таких как IL-6, IL-8, IL-1β) и маркеров некротизирующего апоптоза снижается [59]. Как 2’FL, так и 6’SL подавляют активацию TLR-4, которая связана с инициацией НЭК, и, следовательно, уменьшают воспаление [19]. Кроме того, положительный эффект ОГМ связан с адекватным формированием состава КМБ [60]. У детей на ГВ риск развития НЭК в 6–10 раз ниже, чем у детей, находящихся на ИВ [61]. Возможно, что ОГМ вносят свой вклад в протективный эффект в отношении развития НЭК, они являются иммуномодулирующими компонентами, которые обеспечивают гомеостаз кишечника посредством модуляции состава КМБ и укрепления кишечного барьера [62]. В экcперименте на модели НЭК ОГМ повышают уровень муцина и снижают вероятность адгезии патогенных бактерий к клеткам эпителия [41]. Несекреторный статус FUT2 матери связан с более высоким риском развития НЭК, грамотрицательного сепсиса [63]. В доклинических исследованиях с использованием модели НЭК у новорожденных крыс, которых кормили смесью, содержащей DSLNT, продемонстрировали снижение тяжести НЭК и летальности. В то же время было показано, что ГОС, структурно не похожие на природные ОГМ, не обеспечивают защиты от НЭК и не снижают летальность [28]. Подобные исследования продолжают доказывать зависимость между структурой олигосахаридов и теми эффектами, которые они оказывают в организме, показывая, что механизмы, с помощью которых олигосахариды «работают», зависят от их строения [64]. DSLNT продемонстрировали профилактический и лечебный эффекты в отношении НЭК у детей, находящихся на ИВ, а концентрация DSLNT в молоке матери может служить одним из факторов, способных влиять на риск развития НЭК [17]. Также в результате экспериментального исследования на модели НЭК у новорожденных крыс показана положительная роль самого распространенного ОГМ 2’FL в отношении снижения частоты НЭК, в отличие от ГОС [65].
Механизмы возможного влияния ОГМ на развитие нервной системы ребенка
В младенчестве и раннем детстве развитие мозга и становление когнитивных, поведенческих и социальных функций происходит интенсивно [66] и влияет на последующую академическую успеваемость [67]. Хотя на когнитивное развитие в этот критический период ранней жизни влияют многочисленные факторы, питание играет решающую роль [68]. Современные исследования показывают, что неоптимальное питание в раннем возрасте ассоциировано с ухудшением когнитивного развития и функционированием мозга в последующем [69]. ГМ является оптимальным источником питания для детей раннего возраста. Помимо хорошо известных долгосрочных преимуществ [70], ГВ важно для поддержания оптимального развития нервной системы [71]. В частности, ГВ оказывает положительное влияние на развитие мозга [72] и когнитивных способностей в младенчестве [73] на структурном и функциональном уровне [74]. Существует предположение, что эти эффекты связаны в том числе с содержанием в ГМ олигосахаридов [75]. Опубликовано исследование, результаты которого демонстрируют, что дети, которых не кормили грудью или кормили грудью в течение коротких периодов времени, имеют более низкий коэффициент вербального интеллекта в возрасте 30 лет по сравнению с контрольной группой того же возраста, которых кормили исключительно ГМ в течение 6 мес. и более [76]. Эти данные подтверждают гипотезу о том, что определенные факторы, связанные с ГВ, начиная от связи между матерью и ребенком и заканчивая конкретными биологически активными питательными веществами, являются ключевыми для правильного развития мозга и когнитивных функций. Влияние ОГМ на когнитивное развитие детей может быть связано с их структурными компонентами — сиаловой кислотой и фукозой, которые участвуют в развитии мозга. Сиалилированные ОГМ (олигосахариды, содержащие в своей структуре остатки сиаловой кислоты — Neu5Ac), в частности, могут представлять собой первичный регулятор когнитивного развития, поскольку они являются основным источником Neu5Ac для детей, получающих молоко матери [11]. Сиаловая кислота является важным компонентом ганглиозидов головного мозга и цепей полисиаловой кислоты, которые модифицируют молекулы адгезии нервных клеток (polySia-NCAM). В то время как ганглиозиды играют основополагающую роль в миелинизации [77], нейрогенезе и синаптогенезе [11], полиSia- NCAM больше участвуют в физиологических процессах, оказывающих влияние на созревание и дифференцировку нервных клеток [78].
В удовлетворении потребностей в Neu5Ac могут играть роль сиалилированные ОГМ, присутствующие в ГМ, наиболее распространенными из которых являются 6’-сиалиллактоза (6’SL) и 3′-сиалиллактоза (3′SL), на долю которых приходится ~75% содержания сиаловой кислоты в ГМ [79]. Коровье молоко и стандартные молочные смеси не содержат или содержат гораздо более низкие концентрации сиалилированных ОГМ и, таким образом, могут не покрывать потребности в Neu5Ac [80]. Это может объяснить более низкие концентрации Neu5Ac, ганглиозидов головного мозга и полисиалилированных гликопротеинов, наблюдаемые в лобной коре и сером веществе у детей, организация тканей голов ного мозга которых изучалась с помощью МРТ-сканирования, находящихся на ИВ, по сравнению с детьми, находящимися на ГВ [81].
Фукозилированные гликаны участвуют в нейрональных процессах, которые лежат в основе развития нейронов, обуче ния и памяти [82]. Однако доклинические исследования показали, что интактная 2’FL не пересекает гематоэнце- фалический барьер, хотя свободная фукоза может проникать через него [83].
Рис 3. Двунаправленная ось микробиота–кишечник–мозг.
Таблица. Результаты исследований о влиянии ОГМ на когнитивное развитие младенцев
Рост и развитие мозга в течение первых 3 лет жизни происходят параллельно с развитием КМБ. Кишечник иннервируется энтеральной нервной системой (ЭНС), которая действует независимо от центральной нервной системы (ЦНС). Однако между этими частями нервной системы существует связь, позволяющая обмениваться информацией [84]. КМБ продуцирует нейроактивные соединения, такие как пептиды и нейромедиаторы, участвующие в коммуникации с ЦНС и воздействующие на мозг через нервную сеть (блуждающий нерв с симпатическим и парасимпатическим входом), эндокринную систему и опосредованно через влияние на провоспалительные цитокины (рис. 3). Эти нейроактивные соединения представляют собой промежуточные продукты микробного происхождения, которые могут влиять на функцию и состояние нейронов [85]. КЦЖК микробного происхождения являются не только источником энергии, но также влияют на структурное и функциональное созревание микроглии в ЦНС, действуя как сигнальные молекулы [86]. Описанные выше механизмы прямых и опосредованных через микробиоту кишечника эффектов ОГМ на развитие и функционирование ЦНС позволяют рассматривать их как важный фактор, влияющий на значимые этапы развития голов ного мозга и когнитивные функции у младенцев, как предпосылки для дальнейших исследований потенциальных возможностей применения их в виде одной из перспективных профилактических стратегий снижения рисков интеллектуальных нарушений и поведенческих расстройств у детей [87].
Результаты исследований эффектов ОГМ на познавательные способности детей
Влияние ОГМ на мозг и когнитивное развитие младенцев мало изучено, результаты опубликованных исследований неоднозначны. Эти несоответствия могут возникать из-за различных факторов, включая статус материнской секреции, различия в выборках, методологиях, измерениях результатов и потенциальных вмешивающихся переменных. Важно учитывать, что развитие ребенка — это многогранный процесс, на который влияет множество факторов [88], включая генетику и окружающую среду [89], а на познавательные способности могут в значительной степени влиять отношения между родителями и детьми [90]. Опубликованы данные, демонстрирующие ассоциации между ОГМ и развитием нервной системы и когнитивными показателями [91] (таблица).
P.K.Berger et al. [92] исследовали взаимосвязь между концентрацией 19 ОГМ в ГМ и когнитивным развитием у латиноамериканских младенцев (n = 50), живущих в Лос-Анджелесе, Калифорния. В этом наблюдательном исследовании были собраны образцы грудного молока через 1 и 6 мес. после родов и оценено когнитивное развитие младенцев в возрасте 24 мес. с использованием третьего издания шкалы Бейли (Bayley III). Тест Bayley III проводился для измерения функций когнитивных, языковых и двигательных навыков. Концентрация 2’FL в молоке через 1 мес. после родов была связана с более высокими показателями когнитивного развития младенцев в возрасте 24 мес. Концентрация 2’FL в молоке, собранном через 6 мес. после родов, уже не была связана с когнитивными показателями через 24 мес. Это может говорить о важности поступления ОГМ в более раннем возрасте. Концентрация таких ОГМ, как лакто-N-гексаоза (LNH) и фукозиллакто-N-гексаоза (FLNH), была связана с более высокими показателями когнитивного развития [92]. Это исследование подтверждает результаты доклинических исследований о благотворном влиянии воздействия 2’FL во время лактации на когнитивное развитие. Так как была обнаружена связь между уровнями ОГМ в возрасте 1 и 6 мес. с когнитивными показателями детей в возрасте 24 мес., это позволяет предположить устойчивое влияние воздействия ОГМ в раннем возрасте на развитие ребенка. В исследовании J.M.Jorgensen et al., проведенном в малавийских парах мать—ребенок (n = 659), также собрали образцы молока через 6 мес. после родов, наблюдая смешанные отношения между структурами ОГМ и более поздним развитием ребенка, включая двигательные и языковые навыки. Эти данные в основном зависели от статуса секретора. Например, у младенцев, рожденных только от матерей-секреторов, относительное содержание фукозилированных и сиалилированных ОГМ было положительно связано с языковыми способностями детей в возрасте 18 мес. Дети матерей-секреторов, образцы молока которых содержали относительное количество фукозилированных ОГМ выше медианы, также показали больший словарный запас в возрасте 12 мес., чем дети матерей-секреторов, образцы молока которых содержали относительное количество фукозилированных ОГМ ниже медианы. С другой стороны, положительная связь между относительным содержанием сиалиллакто-N-тетраозы b (LSTb) и рабочей памятью и исполнительной функцией наблюдалась только у несекреторов [95].
Характер траектории роста в младенчестве может определять как краткосрочные, так и долгосрочные последствия для здоровья. Чрезмерное увеличение массы тела в младенчестве связано с повышенным риском ожирения и коморбидных заболеваний [96], в то время как задержка роста ассоциирована с задержкой развития когнитивных и двигательных навыков и повышенным риском смертности [97]. Кроме того, дети, у которых в младенчестве наблюдается отставание в росте, также могут быть склонны к развитию ожирения [98], что позволяет предположить, что устойчивые биологические изменения могут происходить во время нарушений траекторий роста младенцев. Учитывая многочисленные данные, демонстрирующие связь между КМБ в раннем возрасте и составом тела в более позднем возрасте, в этом разделе обзора мы обсудим влияние КМБ и факторов (ОГМ), модулирующих микробиом, на рост младенцев.
В настоящее время опубликованы исследования, демонстрирующие влияние КМБ на метаболизм хозяина, включая обмен глюкозы, липидов и энергии. КЦЖК, являющиеся продуктами жизнедеятельности бактерий, стимулируют секрецию энтероэндокринными клетками кишечника таких гормонов, как глюкагоноподобный пептид 1 (GLP-1) и плазматический пептид YY (PYY) [99], участвующих в регуляции аппетита и чувства сытости опосредованно через рецепторы КЦЖК GPR41 и GPR43 [100, 101] и, тем самым, в регуляции энергетического метаболизма организма хозяина. Первичные желчные кислоты активируют клеточные сигнальные пути в печени и ЖКТ, модулируя собственный биосинтез, метаболизм глюкозы, липидов и энергии [102].
В многочисленных крупных когортных исследованиях сооб щалось о связи между составом КМБ младенцев и росто м [103, 104]. В некоторых проспективных клинических исследованиях было установлено, что более высокие уровни Bacteroides spp., особенно B. fragilis [105], и более низкие уровни Staphylococcus [106] связаны с более высоким ИМТ в раннем возрасте и являются предикторами детского ожирения [104]. В то же время в другом исследовании с участием 49 детей наблюдалось меньшее количество фекальных Bifidobacterium и большее количество фекального S. aureus в возрасте 6 и 12 мес. у младенцев, которые в возрасте 7 лет имели избыточную массу тела и ожирение [107]. Опубликованы исследования, демонстрирующие, что повышенное разнообразие КМБ младенцев в возрасте 3–4 мес. было связано с более высоким риском избыточной массы тела в возрасте 1 года [108]. И, наоборот, в других исследованиях той же когорты позже показано, что более низкое микробное разнообразие кишечника (индекс Шеннона) в возрасте 1 года было связано с быстрым увеличением ИМТ в течение первых 5 лет [109]. Несопоставимые результаты этих исследований могут быть связаны с разными моментами времени, в которые анализировались образцы фекалий. Действительно, в той же группе разнообразие в возрасте 3 мес. было отрицательно связано с разнообразием в возрасте 1 года, что позволяет предположить, что высокое разнообразие в раннем возрасте может препятствовать колонизации новых бактерий в более позднем возрасте [109]. Хотя взаимосвязь между КМБ ребенка и ростом остается сложной, возможно, на рост ребенка влияют кумулятивные изменения в КМБ, а не состояние микробиома в определенный момент времени [109]. Действительно, основным влиянием может быть развитие КМБ как экологической системы и после довательный порядок колонизации и преемственности в кишечнике младенца. С этой точки зрения при анализе взаимосвязи между КМБ ребенка и ростом следует учитывать факторы, влияющие на созревание микробиома, такие как субстраты и продукты бактериального метаболизма и антибактериальные соединения, биоактивные компоненты ГМ.
В настоящее время опубликованы данные исследований, по результатам которых выявили различные ассоциации между отдельными ОГМ и/или разнообразием ОГМ и ростом ребенка [110, 111]. Недавние данные, полученные в исследованиях у доношенных младенцев, позволяют предположить, что ОГМ могут быть связаны с физическим ростом в младенчестве. При наблюдении доношенных детей, находящихся на ГВ, среди секреторов более высокий уровень 2’FL был связан с более высокими показателями массы тела младенцев [112], длины тела [113] и жировой массы [110], тогда как более высокий уровень 6’SL, LNnT и разнообразие ОГМ были связаны с более низкими показателями массы и длины тела в течение первого года жизни [112], ИМТ [110, 111, 113], жировой массой [110] и процентом жировой массы [114]. Сообщалось также о противоположном результате увеличения массы тела ребенка, но только у матерей-несекреторов [92]. Смешанные ассоциации наблюдались между 3’SL и весом и ростом младенцев: по данным H.Lagström et al. и M.W.Larsson et al. [110, 112] были обнаружены положительные ассоциации, а K.Tonon et al. [115] выявили отрицательные ассоциации. Хотя стратификация среди младенцев, получающих только молоко от матерей-секреторов, пока зала повышенную значимую связь с ростом ребенка по сравнению с комбинированным анализом, эти связи были обнаружены только в единичных исследованиях для большинства отдельных ОГМ. В данных исследованиях сообщается о различных результатах между отдельными ОГМ и ростом ребенка в зависимости от секреторного статуса мате ри, секреторный статус сам по себе не предсказывает траекторию роста ребенка. Следовательно, роль ОГМ в росте младенцев может быть независимой от статуса секреции или, возможно, эти результаты были неоднозначны из-за измерения концентраций, а не общего потребления младенцами. Доказаны ассоциации между антропометрическими показателями младенцев и наиболее распространенными сиалилированными ОГМ — 3’SL [112, 116, 117]. Концентрация 3’SL положительно связана с массой тела ребенка [117], длиной тела [110], окружностью головы [118], соотношением массы тела к длине тела [119], жировой массой [116] и безжировой массой [113], за исключением одного исследования, в котором сообщалось об отрицательной связи с ростом ребенка [119]. Это несоответствие может быть связано со временем измерения антропометрических показателей младенцев (от рождения до 4 мес. в одном исследовании и от 5 до 9 мес. в другом). Необходимы дальнейшие исследования, чтобы определить, меняется ли взаимосвязь между ОГМ и составом тела ребенка в течение периода лактации.
H.Lagström et al. [112] и J.M.Jorgensen et al. [95] не обнаружили каких-либо связей между отдельными ОГМ в несекреторном молоке и антропометрическими показателями младенцев. K.Tonon et al. [115] и H.Lagström et al. [112] обнаружили, что концентрация 6’SL в ГМ имела обратную связь с массой тела детей, а P.Menzel et al. [111] обнаружили обратную связь с ИМТ. Однако, когда A.S.Cheema et al. [120] учитывали потребление молока вместо концентрации ОГМ в молоке, они обнаружили положительную связь между 6’SL и массой тела ребенка.
Исследования, посвященные изучению влияния ОГМ на рост младенцев, включенные в наш обзор, имели значительные различия в аналитических методах, условиях исследования и статусе вскармливания младенцев, что, с одной стороны, не исключает роль ОГМ в процессах регуляции роста ребенка, с другой — требует проведения дальнейших исследований в этом направлении.
Рост научно обоснованных доказательств и сознание важности ОГМ для здоровья и развития детей инициировали исследовательский интерес во всем мире в области синтеза и производства этих важных компонентов. Это привело к революционным изменениям в производстве детского питания. В настоящее время ОГМ используются в качестве добавок к детским молочным смесям, чтобы обеспечить детей, у которых по каким-то причинам ГВ невозможно, олигосахаридами, идентичными тем, которые содержатся в ГМ. Клинические исследования уже несколько лет назад продемонстрировали безопасность и хорошую переносимость детских молочных смесей, содержащих только 2’FL, комбинацию двух ОГМ — 2’FL и LNnT. В последние годы были достигнуты значительные технологические прорывы в производстве более сложных молекул ОГМ. В 2022 г. были опубликованы результаты рандомизированного контролируемого двойного слепого исследования, проведенного в период с 2018 по 2021 г. в 32 исследовательских центрах в Болгарии, Венгрии и Польше. Всего в исследование были включены 4 группы детей (n = 693) в возрасте первых 3 нед. жизни: 2 группы детей на ИВ получали детскую молочную смесь с 5 ОГМ (2’FL, 3’SL, 6’SL, LNT, и DFL) в количестве 1,5 и 2,5 г/л (группы исследования, тестируемые); 1 группа получала аналогичную смесь, но без ОГМ (контроль), 1 группа состояла из детей на ГВ. В начале исследования, через 3 и 6 мес. проводили изучение состава КМБ с использованием метагеномного анализа (MGS), определяли уровни секреторного иммуноглобулина А (sIgA), фекального кальпротектина (ФК), α-1-антитрипсина, КЦЖК и рН кала. По результатам проведенных исследований в возрасте детей 3 и 6 мес. было показано, что уровень α- и β-разнообразия КМБ в группах детей, получающих смеси с ОГМ, отличался от состава КМБ детей из контрольной группы и приближался к показателям детей из группы ГВ, причем эти данные относятся как к детям, рожденным естественным путем, так и к детям, рожденным путем операции кесарева сечения. Количество Bifidobacterium (в т.ч. B. infantis) увеличилось в тестируемых группах и было близко к группе ГВ, но снизилось в контроле. Показатели содержания Clostridioides (C. difficile) были сходными в группах ИВ в начале исследования, а через 3 и 6 мес. их относительное содержание в тестируемых группах было на 75–85% ниже, чем в контроле, и сопоставимо с содержанием в группе ГВ. Уровень sIgA в группах с ОГМ был выше, чем в контрольной, и был самым высоким в группе ГВ. Уровни α-1- антитрипсина, ФК, pH кала были ниже в тестируемых группах, чем в контрольной. В контрольной группе была самая низкая концентрация лактата, тогда как в группе ГВ — самая высокая. Относительная доля ацетата в общем количестве КЦЖК через 3 и 6 мес. была ниже в контрольной группе по сравнению с тестовыми группами, что подтверждает положительное влияние ОГМ на состав КМБ, а следовательно, и влияние на количество метаболитов. Таким образом, была показана способность смеси из 5 ОГМ стимулировать «развитие» КМБ у детей на искусственном вскармливании, увеличивая содержание Bifidobacterium, особенно B. infantis, в т.ч. у детей, рожденных путем кесарева сечения, что логично подтверждается увеличением концентрации ацетата и лактата, основных конечных продуктов катаболизма бифидобактерий, а также снижением уровня pH. Смесь из 5 ОГМ улучшает иммунный ответ, увеличивая синтез sIgA, а также способствует снижению уровня ФК, маркера воспаления. Таким образом, добавление в детское питание смеси из пяти наиболее важных представителей всех трех категорий ОГМ является оправданным и эффективным способом поддержания оптимального состава КМБ, кишечного барьера и иммунной системы в раннем возрасте у детей, находящихся на ИВ.
В этом обзоре мы предприняли попытку проанализировать некоторые известные данные о влиянии ОГМ на здоровье, рост и развитие ребенка и их потенциал в предупреждении отдельных заболеваний. ОГМ, ферментируемые преимущественно младенческими штаммами Bifidobacterium, способствуют адекватному формированию состава КМБ у детей на ГВ. Благодаря накопленным научным данным об антиадгезивных, антимикробных эффектах отдельных ОГМ в отношении ряда вирусов, бактерий, грибов, а также о механизмах влияния на состоятельность кишечного барьера мы приближаемся к пониманию роли этих компонентов ГМ в снижении риска развития ряда заболеваний. ОГМ могут модулировать иммунный ответ новорожденных косвенно, изменяя состав КМБ и ее метаболитов, а также напрямую, влияя на реакции эпителия и иммунных клеток в кишечнике или системный иммунный ответ. Все более становится очевидным, что ОГМ также влияют на траекторию когнитивного и физического развития ребенка. В тех случаях, когда ГВ невозможно, важное значение приобретает доступность обогащенных детских смесей, имитирующих функциональные свойства ГМ. Клинические исследования уже несколько лет назад показали безопасность и хорошую переносимость таких детских молочных смесей, и более того, например, смесь с 2 ОГМ (2’FL, LNnT) продемонстрировала положительное влияние в отношении снижения риска развития заболеваний нижних дыхательных путей. В настоящее время доступна детская молочная смесь, обогащенная 5 ОГМ (2’FL, 3’SL, 6’SL, LNT, DFL). В ходе рандомизированного контролируемого двойного слепого исследования была показана способность смеси из 5 ОГМ стимулировать развитие КМБ у детей на ИВ, увеличивая содержание Bifidobacterium, положительно влиять на иммунный ответ, барьерную функцию кишечника. По мере появления новых научных данных становится все более понятным важное влияние ОГМ на здоровье ребенка, во многом зависящее от их уникальной структуры, открываются новые возможности использования этих компонентов у детей на ИВ.
Финансирование: Финансирование данной работы не проводилось.
Конфликт интересов: Доготарь О.С. является сотрудником ООО «Нестле Россия».
1. Brockway MM, Daniel AI, Reyes SM, Gauglitz JM, Granger M, McDermid JM, et al. Human Milk Bioactive Components and Child Growth and Body Composition in the First 2 Years: A Systematic Review. Adv Nutr. 2024 Jan;15(1):100127. DOI: 10.1016/j.advnut.2023.09.015
2. Федеральная служба государственной статистики. Адрес: https://rosstat.gov. ru/folder/13721
3. Ballard O, Morrow AL. Human milk composition: nutrients and bioactive factors. Pediatr Clin North Am. 2013 Feb;60(1):49-74. DOI: 10.1016/j.pcl.2012.10.002
4. Hamosh M. Bioactive factors in human milk. Pediatr Clin North Am. 2001 Feb; 48(1):69-86. DOI: 10.1016/s0031-3955(05)70286-8
5. Carr LE, Virmani MD, Rosa F, Munblit D, Matazel KS, Elolimy AA, et al. Role of Human Milk Bioactives on Infants’ Gut and Immune Health. Front Immunol. 2021 Feb 12;12:604080. DOI: 10.3389/fimmu.2021.604080
6. Bode L. Human Milk Oligosaccharides: Structure and Functions. Nestle Nutr Inst Workshop Ser. 2020;94:115-123. DOI: 10.1159/000505339
7. Donovan SM, Comstock SS. Human Milk Oligosaccharides Influence Neonatal Mucosal and Systemic Immunity. Ann Nutr Metab. 2016;69 Suppl 2(Suppl 2): 42-51. DOI: 10.1159/000452818
8. Triantis V, Bode L, van Neerven RJJ. Immunological Effects of Human Milk Oligosaccharides. Front Pediatr. 2018 Jul 2;6:190. DOI: 10.3389/fped.2018.00190
9. Thum C, Wall CR, Weiss GA, Wang W, Szeto IM-Y, Day L. Changes in HMO Concentrations throughout Lactation: Influencing Factors, Health Effects and Opportunities. Nutrients. 2021 Jun 30;13(7):2272. DOI: 10.3390/nu13072272
10. Lefebvre G, Shevlyakova M, Charpagne A, Marquis J, Vogel M, Kirsten T, et al. Time of Lactation and Maternal Fucosyltransferase Genetic Polymorphisms Determine the Variability in Human Milk Oligosaccharides. Front Nutr. 2020 Oct 29;7:574459. DOI: 10.3389/fnut.2020.574459
11. Bode L. Human milk oligosaccharides: every baby needs a sugar mama. Glycobiology. 2012 Sep;22(9):1147-62. DOI: 10.1093/glycob/cws074
12. Han SM, Derraik JGB, Binia A, Sprenger N, Vickers MH, Cutfield WS. Maternal and Infant Factors Influencing Human Milk Oligosaccharide Composition: Beyond Maternal Genetics. J Nutr. 2021 Jun 1;151(6):1383-1393. DOI: 10.1093/jn/ nxab028
13. Cabrera-Rubio R, Kunz C, Rudloff S, García-Mantrana I, Crehuá-Gaudiza E, Martínez-Costa C, et al. Association of Maternal Secretor Status and Human Milk Oligosaccharides With Milk Microbiota: An Observational Pilot Study. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2019 Feb;68(2):256-263. DOI: 10.1097/ MPG.0000000000002216
14. Wu J, Wu S, Huo J, Ruan H, Xu X, Hao Z, et al. Systematic Characterization and Longitudinal Study Reveal Distinguishing Features of Human Milk Oligo- saccharides in China. Curr Dev Nutr. 2020 Jul 2;4(8):nzaa113. DOI: 10.1093/ cdn/nzaa113
15. Docq S, Spoelder M, Wang W, Homberg JR. The Protective and Long-Lasting Effects of Human Milk Oligosaccharides on Cognition in Mammals. Nutrients. 2020 Nov 21;12(11):3572. DOI: 10.3390/nu12113572
16. Craft KM, Townsend SD. The Human Milk Glycome as a Defense Against Infectious Diseases: Rationale, Challenges, and Opportunities. ACS Infect Dis. 2018 Feb 9; 4(2):77-83. DOI: 10.1021/acsinfecdis.7b00209
17. Wiciński M, Sawicka E, Gębalski J, Kubiak K, Malinowski B. Human Milk Oligosaccharides: Health Benefits, Potential Applications in Infant Formulas, and Pharmacology. Nutrients. 2020 Jan 20;12(1):266. DOI: 10.3390/nu12010266
18. Laursen MF. Gut Microbiota Development: Influence of Diet from Infancy to Toddlerhood. Ann Nutr Metab. 2021 Aug 30:1-14. DOI: 10.1159/000517912
19. Dinleyici M, Barbieur J, Dinleyici EC, Vandenplas Y. Functional effects of human milk oligosaccharides (HMOs). Gut Microbes. 2023 Jan-Dec;15(1):2186115. DOI:10.1080/19490976.2023.218611
20. Milani C, Duranti S, Bottacini F, Casey E, Turroni F, Mahony J, et al. The First Microbial Colonizers of the Human Gut: Composition, Activities, and Health Implications of the Infant Gut Microbiota. Microbiol Mol Biol Rev. 2017 Nov 8; 81(4):e00036-17. DOI: 10.1128/MMBR.00036-17
21. Zhang B, Li LQ, Liu F, Wu JY. Human milk oligosaccharides and infant gut microbiota: Molecular structures, utilization strategies and immune function. Carbohydr Polym. 2022 Jan 15; 276:118738. DOI: 10.1016/j.carbpol.2021.118738
22. Lawson MAE, O’Neill IJ, Kujawska M, Gowrinadh Javvadi S, Wijeyesekera A, et al. Breast milk-derived human milk oligosaccharides promote Bifidobacterium interactions within a single ecosystem. ISME J. 2020 Feb;14(2):635-648. DOI: 10.1038/s41396-019-0553-2
23. Lin C, Lin Y, Zhang H, Wang G, Zhao J, Zhang H, et al. Intestinal ’Infant-Type’ Bifidobacteria Mediate Immune System Development in the First 1000 Days of Life. Nutrients. 2022 Apr 2;14(7):1498. DOI: 10.3390/nu14071498
24. Berger B, Porta N, Foata F, Grathwohl D, Delley M, Moine D, et al. Linking Human Milk Oligosaccharides, Infant Fecal Community Types, and Later Risk To Require Antibiotics. mBio. 2020 Mar 17;11(2):e03196-19. DOI: 10.1128/ mBio.03196-19
25. Salli K, Anglenius H, Hirvonen J, Hibberd AA, Ahonen I, Saarinen MT, et al. The effect of 2’-fucosyllactose on simulated infant gut microbiome and metabolites; a pilot study in comparison to GOS and lactose. Sci Rep. 2019 Sep 13;9(1):13232. DOI: 10.1038/s41598-019-49497-z
26. Morozov V, Hansman G, Hanisch FG, Schroten H, Kunz C. Human Milk Oligo- saccharides as Promising Antivirals. Mol Nutr Food Res. 2018 Mar;62(6): e1700679. DOI: 10.1002/mnfr.201700679
27. Hill DR, Chow JM, Buck RH. Multifunctional Benefits of Prevalent HMOs: Implications for Infant Health. Nutrients. 2021 Sep 25;13(10):3364. DOI: 10.3390/ nu13103364
28. Jantscher-Krenn E, Lauwaet T, Bliss LA, Reed SL, Gillin FD, Bode L. Human milk oligosaccharides reduce Entamoeba histolytica attachment and cytotoxicity in vitro. Br J Nutr. 2012 Nov 28;108(10):1839-46. DOI: 10.1017/S0007114511007392
29. Plows JF, Berger PK, Jones RB, Alderete TL, Yonemitsu C, Najera JA, et al. Longitudinal Changes in Human Milk Oligosaccharides (HMOs) Over the Course of 24 Months of Lactation. J Nutr. 2021 Apr 8;151(4):876-882. DOI: 10.1093/jn/ nxaa427
30. Hong P, Ninonuevo MR, Lee B, Lebrilla C, Bode L. Human milk oligosaccharides reduce HIV-1-gp120 binding to dendritic cell-specific ICAM3-grabbing non-integrin (DC-SIGN). Br J Nutr. 2009 Feb;101(4):482-6. DOI: 10.1017/s0007114508025804
31. Ray C, Kerketta JA, Rao S, Patel S, Dutt S, Arora K, et al. Human Milk Oligosaccharides: The Journey Ahead. Int J Pediatr. 2019 Aug 4; 2019:2390240. DOI: 10.1155/2019/2390240
32. Autran CA, Kellman BP, Kim JH, Asztalos E, Blood AB, Spence ECH, et al. Human milk oligosaccharide composition predicts risk of necrotising enterocolitis in preterm infants. Gut. 2018 Jun;67(6):1064-1070. DOI: 10.1136/gutjnl-2016-312819
33. Lin AE, Autran CA, Szyszka A, Escajadillo T, Huang M, Godula K, et al. Human milk oligosaccharides inhibit growth of group B Streptococcus. J Biol Chem. 2017 Jul 7;292(27):11243-11249. DOI: 10.1074/jbc.M117.789974
34. Ackerman DL, Craft KM, Doster RS, Weitkamp JH, Aronoff DM, Gaddy JA, et al. Antimicrobial and Antibiofilm Activity of Human Milk Oligosaccharides against Streptococcus agalactiae, Staphylococcus aureus, and Acinetobacter baumannii. ACS Infect Dis. 2018 Mar 9;4(3):315-324. DOI: 10.1021/acsinfecdis.7b00183
35. Xiao L, Van’t Land B, Engen PA, Naqib A, Green SJ, Nato A, et al. Human milk oligosaccharides protect against the development of autoimmune diabetes in NOD-mice. Sci Rep. 2018 Mar 1;8(1):3829. DOI: 10.1038/s41598-018-22052-y
36. Holscher HD, Davis SR, Tappenden KA. Human milk oligosaccharides influence maturation of human intestinal Caco-2Bbe and HT-29 cell lines. J Nutr. 2014 May;144(5):586-91. DOI: 10.3945/jn.113.189704
37. Holscher HD, Bode L, Tappenden KA. Human Milk Oligosaccharides Influence Intestinal Epithelial Cell Maturation In Vitro. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2017 Feb;64(2):296-301. DOI: 10.1097/MPG.0000000000001274
38. Grabinger T, Glaus Garzon JF, Hausmann M, Geirnaert A, Lacroix C, et al. Allevi- ation of Intestinal Inflammation by Oral Supplementation With 2-Fucosyllac tose in Mice. Front Microbiol. 2019 Jun 19; 10:1385. DOI: 10.3389/fmicb.2019.01385
39. Walsh C, Lane JA, van Sinderen D, Hickey RM. Human milk oligosaccharides: Shaping the infant gut microbiota and supporting health. J Funct Foods. 2020 Sep; 72:104074. DOI: 10.1016/j.jff.2020.104074
40. Hodzic Z, Bolock AM, Good M. The Role of Mucosal Immunity in the Pathogenesis of Necrotizing Enterocolitis. Front Pediatr. 2017 Mar 3;5:40. DOI: 10.3389/ fped.2017.00040
41. Wu RY, Li B, Koike Y, Määttänen P, Miyake H, Cadete M, et al. Human Milk Oligosaccharides Increase Mucin Expression in Experimental Necrotizing Enterocolitis. Mol Nutr Food Res. 2019 Feb;63(3): e1800658. DOI: 10.1002/ mnfr.201800658
42. Cheng L, Kong C, Walvoort MTC, Faas MM, de Vos P. Human Milk Oligosaccharides Differently Modulate Goblet Cells Under Homeostatic, Proinflammatory Conditions and ER Stress. Mol Nutr Food Res. 2020 Mar;64(5):e1900976. DOI: 10.1002/ mnfr.201900976
43. Kulinich A, Liu L. Human milk oligosaccharides: The role in the fine-tuning of innate immune responses. Carbohydr Res. 2016 Sep 2;432:62-70. DOI: 10.1016/j. carres.2016.07.009
44. Rudloff S, Pohlentz G, Diekmann L, Egge H, Kunz C. Urinary excretion of lactose and oligosaccharides in preterm infants fed human milk or infant formula. Acta Paediatr. 1996 May;85(5):598-603. DOI: 10.1111/j.1651-2227.1996.tb14095.x
45. Goehring KC, Kennedy AD, Prieto PA, Buck RH. Direct evidence for the presence of human milk oligosaccharides in the circulation of breastfed infants. PLoS One. 2014 Jul 7;9(7):e101692. DOI: 10.1371/journal.pone.0101692
46. He Y, Liu S, Leone S, Newburg DS. Human colostrum oligosaccharides modulate major immunologic pathways of immature human intestine. Mucosal Immunol. 2014 Nov;7(6):1326-39. DOI: 10.1038/mi.2014.20
47. Xiao L, van De Worp WR, Stassen R, van Maastrigt C, Kettelarij N, Stahl B, et al. Human milk oligosaccharides promote immune tolerance via direct interactions with human dendritic cells. Eur J Immunol. 2019 Jul;49(7):1001-1014. DOI: 10.1002/eji.201847971
48. Zhang W, Yan J, Wu L, Yu Y, Ye RD, Zhang Y, et al. In vitro immunomodulatory effects of human milk oligosaccharides on murine macrophage RAW264.7 cells. Carbohydr Polym. 2019 Mar 1;207:230-238. DOI: 10.1016/j.carbpol.2018.11.039
49. Castillo-Courtade L, Han S, Lee S, Mian FM, Buck R, Forsythe P. Attenuation of food allergy symptoms following treatment with human milk oligosaccharides in a mouse model. Allergy. 2015 Sep;70(9):1091-102. DOI: 10.1111/all.12650
50. Eiwegger T, Stahl B, Haidl P, Schmitt J, Boehm G, Dehlink E, et al. Prebiotic oligosaccharides: in vitro evidence for gastrointestinal epithelial transfer and immunomodulatory properties. Pediatr Allergy Immunol. 2010 Dec;21(8):1179- 88. DOI: 10.1111/j.1399-3038.2010. 01062.x
51. Zenhom M, Hyder A, de Vrese M, Heller KJ, Roeder T, Schrezenmeir J. Prebiotic oligosaccharides reduce proinflammatory cytokines in intestinal Caco-2 cells via activation of PPARγ and peptidoglycan recognition protein 3. J Nutr. 2011 May; 141(5):971-7. DOI: 10.3945/jn.110.136176
52. Goehring KC, Marriage BJ, Oliver JS, Wilder JA, Barrett EG, Buck RH. Similar to Those Who Are Breastfed, Infants Fed a Formula Containing 2’-Fucosyllactose Have Lower Inflammatory Cytokines in a Randomized Controlled Trial. J Nutr. 2016 Dec;146(12):2559-2566. DOI: 10.3945/jn.116.236919
53. Section on Breastfeeding. Breastfeeding and the use of human milk. Pediatrics. 2012 Mar;129(3):e827-41. DOI: 10.1542/peds.2011-3552
54. Siziba LP, Mank M, Stahl B, Kurz D, Gonsalves J, Blijenberg B, et al. Human milk oligosaccharide profiles and child atopic dermatitis up to 2 years of age: The Ulm SPATZ Health Study. Pediatr Allergy Immunol. 2022 Feb;33(2):e13740. DOI: 10.1111/pai.13740
55. Seppo AE, Autran CA, Bode L, Järvinen KM. Human milk oligosaccharides and development of cow’s milk allergy in infants. J Allergy Clin Immunol. 2017 Feb;139(2):708-711.e5. DOI: 10.1016/j.jaci.2016.08.031
56. Korpela K, Salonen A, Hickman B, Kunz C, Sprenger N, Kukkonen K, et al. Fucosylated oligosaccharides in mother’s milk alleviate the effects of caesarean birth on infant gut microbiota. Sci Rep. 2018 Sep 13;8(1):13757. DOI: 10.1038/ s41598-018-32037-6
57. Bozorgmehr T, Boutin RCT, Woodward SE, Donald K, Chow JM, Buck RH, et al. Early Life Exposure to Human Milk Oligosaccharides Reduces Allergic Response in a Murine Asthma Model. J Immunol Res. 2023 Jul 29;2023:9603576. DOI: 10.1155/2023/9603576
58. Bode L. Human Milk Oligosaccharides in the Prevention of Necrotizing Enterocolitis: A Journey from in vitro and in vivo Models to Mother-Infant Cohort Studies. Front Pediatr. 2018 Dec 4;6:385. DOI: 10.3389/fped.2018.00385
59. Wang X, Li L, Liu T, Shi Y. More than nutrition: Therapeutic potential and mechanism of human milk oligosaccharides against necrotizing enterocolitis. Life Sci. 2024 Feb 15;339:122420. DOI: 10.1016/j.lfs.2024.122420
60. Masi AC, Embleton ND, Lamb CA, Young G, Granger CL, Najera J, et al. Human milk oligosaccharide DSLNT and gut microbiome in preterm infants predicts necrotising enterocolitis. Gut. 2021 Dec;70(12):2273-2282. DOI: 10.1136/ gutjnl-2020-322771
61. Zhu L, Li H, Luo T, Deng Z, Li J, Zheng L, et al. Human Milk Oligosaccharides: A Critical Review on Structure, Preparation, Their Potential as a Food Bioactive Component, and Future Perspectives. J Agric Food Chem. 2023 Nov 1;71(43): 15908-15925. DOI: 10.1021/acs.jafc.3c04412
62. Nolan LS, Rimer JM, Good M. The Role of Human Milk Oligosaccharides and Probiotics on the Neonatal Microbiome and Risk of Necrotizing Enterocolitis: A Narrative Review. Nutrients. 2020 Oct 6;12(10):3052. DOI: 10.3390/nu12103052
63. Morrow AL, Meinzen-Derr J, Huang P, Schibler KR, Cahill T, Keddache M, et al. Fucosyltransferase 2 non-secretor and low secretor status predicts severe outcomes in premature infants. J Pediatr. 2011 May;158(5):745-51. DOI: 10.1016/ j.jpeds.2010.10.043
64. Wu RY, Li B, Horne RG, Ahmed A, Lee D, Robinson SC, et al. Structure- Function Relationships of Human Milk Oligosaccharides on the Intestinal Epithelial Transcriptome in Caco-2 Cells and a Murine Model of Necrotizing Enterocolitis. Mol Nutr Food Res. 2022 Feb;66(4): e2100893. DOI: 10.1002/ mnfr.202100893
65. Autran CA, Schoterman MH, Jantscher-Krenn E, Kamerling JP, Bode L. Sialylated galacto-oligosaccharides and 2’-fucosyllactose reduce necrotising enterocolitis in neonatal rats. Br J Nutr. 2016 Jul;116(2):294-9. DOI: 10.1017/S0007114516002038
66. Johnson MH. Functional brain development in humans. Nat Rev Neurosci. 2001 Jul;2(7):475-83. DOI: 10.1038/35081509
67. Clark CAC, Pritchard VE, Woodward LJ. Preschool executive functioning abilities predict early mathematics achievement. Dev Psychol. 2010 Sep;46(5):1176-1191. DOI: 10.1037/a0019672
68. Nyaradi A, Li J, Hickling S, Foster J, Oddy WH. The role of nutrition in children’s neurocognitive development, from pregnancy through childhood. Front Hum Neurosci. 2013 Mar 26;7:97. DOI: 10.3389/fnhum.2013.00097
69. Chatoor I, Begtrup R, Cheng IY, Vismara L, Webb LE, Lucarelli L. Failure to thrive in toddlers with lack of interest in eating and food and their cognitive development during later childhood. Front Pediatr. 2023 Aug 29;11:1179797. DOI: 10.3389/ fped.2023.1179797
70. Horta BL, Loret de Mola C, Victora CG. Long-term consequences of breastfeeding on cholesterol, obesity, systolic blood pressure and type 2 diabetes: a systematic review and meta-analysis. Acta Paediatr. 2015 Dec;104(467):30-7. DOI: 10.1111/ apa.13133
71. Victora CG, Horta BL, Loret de Mola C, Quevedo L, Pinheiro RT, Gigante DP, et al. Association between breastfeeding and intelligence, educational attainment, and income at 30 years of age: a prospective birth cohort study from Brazil. Lancet Glob Health. 2015 Apr;3(4):e199-205. DOI: 10.1016/S2214-109X(15)70002-1
72. Isaacs EB, Fischl BR, Quinn BT, Chong WK, Gadian DG, Lucas A. Impact of breast milk on intelligence quotient, brain size, and white matter development. Pediatr Res. 2010 Apr;67(4):357-62. DOI: 10.1203/PDR.0b013e3181d026da
73. Patel R, Oken E, Bogdanovich N, Matush L, Sevkovskaya Z, Chalmers B, et al. Cohort profile: The promotion of breastfeeding intervention trial (PROBIT). Int J Epidemiol. 2014 Jun;43(3):679-90. DOI: 10.1093/ije/dyt003
74. Wang B. Molecular mechanism underlying sialic acid as an essential nutrient for brain development and cognition. Adv Nutr. 2012 May 1;3(3):465S-72S. DOI: 10.3945/an.112.001875
75. Hauser J, Pisa E, Arias Vásquez A, Tomasi F, Traversa A, Chiodi V, et al. Sialylated human milk oligosaccharides program cognitive development through a non- genomic transmission mode. Mol Psychiatry. 2021 Jul;26(7):2854-2871. DOI: 10.1038/s41380-021-01054-9
76. Victora CG, Bahl R, Barros AJ, França GV, Horton S, Krasevec J, et al; Lancet Breastfeeding Series Group. Breastfeeding in the 21 st century: epidemiology, mechanisms, and lifelong effect. Lancet. 2016 Jan 30;387(10017):475-90. DOI: 10.1016/S0140-6736(15)01024-7
77. Schnaar RL, Gerardy-Schahn R, Hildebrandt H. Sialic acids in the brain: gangliosides and polysialic acid in nervous system development, stability, disease, and regeneration. Physiol Rev. 2014 Apr;94(2):461-518. DOI: 10.1152/ physrev.00033.2013
78. Senkov O, Sun M, Weinhold B, Gerardy-Schahn R, Schachner M, Dityatev A. Polysialylated neural cell adhesion molecule is involved in induction of long-term potentiation and memory acquisition and consolidation in a fear-conditioning paradigm. J Neurosci. 2006 Oct 18;26(42):10888-109898. DOI: 10.1523/ JNEUROSCI.0878-06.2006
79. Nakano T, Sugawara M, Kawakami H. Sialic acid in human milk: composition and functions. Acta Paediatr Taiwan. 2001 Jan-Feb;42(1):11-7.
80. ten Bruggencate SJ, Bovee-Oudenhoven IM, Feitsma AL, van Hoffen E, Schoter- man MH. Functional role and mechanisms of sialyllactose and other sialylated milk oligosaccharides. Nutr Rev. 2014 Jun;72(6):377-89. DOI: 10.1111/ nure.12106
81. Wang B. Sialic acid is an essential nutrient for brain development and cognition. Annu Rev Nutr. 2009;29:177-222. DOI: 10.1146/annurev.nutr.28.061807.155515
82. Mountford C, Quadrelli S, Lin A, Ramadan S. Six fucose-α(1-2) sugars and α-fucose assigned in the human brain using in vivo two-dimensional MRS. NMR Biomed. 2015 Mar;28(3):291-6. DOI: 10.1002/nbm.3239
83. Kuntz S, Kunz C, Borsch C, Vazquez E, Buck R, Reutzel M, et al. Metabolic Fate and Distribution of 2´-Fucosyllactose: Direct Influence on Gut Microbial Activity but not on Brain. Mol Nutr Food Res. 2019 Jul;63(13):e1900035. DOI: 10.1002/ mnfr.201900035
84. Rao M, Gershon MD. The bowel and beyond: the enteric nervous system in neurological disorders. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2016 Sep;13(9):517-28. DOI: 10.1038/nrgastro.2016.107
85. Larraufie P, Martin-Gallausiaux C, Lapaque N, Dore J, Gribble FM, Reimann F, et al. SCFAs strongly stimulate PYY production in human enteroendocrine cells. Sci Rep. 2018 Jan 8;8(1):74. DOI: 10.1038/s41598-017-18259-0
86. Heiss CN, Olofsson LE. The role of the gut microbiota in development, function and disorders of the central nervous system and the enteric nervous system. J Neuroendocrinol. 2019 May;31(5): e12684. DOI: 10.1111/jne.12684
87. Sarkar A, Yoo JY, Valeria Ozorio Dutra S, Morgan KH, Groer M. The Association between Early-Life Gut Microbiota and Long-Term Health and Diseases. J Clin Med. 2021 Jan 25;10(3):459. DOI: 10.3390/jcm10030459
88. Likhar A, Baghel P, Patil M. Early Childhood Development and Social Determi- nants. Cureus. 2022 Sep 23;14(9):e29500. DOI: 10.7759/cureus.29500
89. Gilmore JH, Knickmeyer RC, Gao W. Imaging structural and functional brain development in early childhood. Nat Rev Neurosci. 2018 Feb 16;19(3):123-137. DOI: 10.1038/nrn.2018.1
90. Safa MD, White RMB, Knight GP. Family contextual influences on bicultural competence development among U.S. Mexican-origin youths. Dev Psychol. 2020 Aug;56(8):1596-1609. DOI: 10.1037/dev0001022
91. Fan Y, McMath AL, Donovan SM. Review on the Impact of Milk Oligosaccharides on the Brain and Neurocognitive Development in Early Life. Nutrients. 2023 Aug 26;15(17):3743. DOI: 10.3390/nu15173743
92. Berger PK, Plows JF, Jones RB, Alderete TL, Yonemitsu C, Poulsen M, et al. Human milk oligosaccharide 2’-fucosyllactose links feedings at 1 month to cognitive development at 24 months in infants of normal and overweight mothers. PLoS One. 2020 Feb 12;15(2):e0228323. DOI: 10.1371/journal.pone.0228323
93. Cho S, Zhu Z, Li T, Baluyot K, Howell BR, Hazlett HC, et al. Human milk 3’-Sialyllactose is positively associated with language development during infancy. Am J Clin Nutr. 2021 Aug 2;114(2):588-597. DOI: 10.1093/ajcn/nqab103
94. Oliveros E, Martín M, Torres-Espínola F, Segura-Moreno M, Ramírez M, Santos A, et al. Human milk levels of 2-fucosyllactose and 6-sialyllactose are positively associated with infant neurodevelopment and are not impacted by maternal BMI or diabetic status. J. Nutr. Food Sci. 2021;4:100024.
95. Jorgensen JM, Young R, Ashorn P, Ashorn U, Chaima D, Davis JCC, et al. Associations of human milk oligosaccharides and bioactive proteins with infant growth and development among Malawian mother-infant dyads. Am J Clin Nutr. 2021 Jan 4;113(1):209-220. DOI: 10.1093/ajcn/nqaa272
96. Nummela SR, Salo P, Pahkala K, Raitakari OT, Viikari J, Rönnemaa T, et al. Weight gain in infancy and markers of cardiometabolic health in young adulthood. Acta Paediatr. 2022 Aug;111(8):1603-1611. DOI: 10.1111/apa.16349
97. Belfort MB, Rifas-Shiman SL, Rich-Edwards JW, Kleinman KP, Oken E, Gillman MW. Infant growth and child cognition at 3 years of age. Pediatrics. 2008 Sep;122(3): e689-95. DOI: 10.1542/peds.2008-0500
98. Hoffman DJ, Sawaya AL, Verreschi I, Tucker KL, Roberts SB. Why are nutritionally stunted children at increased risk of obesity? Studies of metabolic rate and fat oxidation in shantytown children from São Paulo, Brazil. Am J Clin Nutr. 2000 Sep;72(3):702-7. DOI: 10.1093/ajcn/72.3.702
99. Chambers ES, Viardot A, Psichas A, Morrison DJ, Murphy KG, Zac-Varghese SE, et al. Effects of targeted delivery of propionate to the human colon on appetite regulation, body weight maintenance and adiposity in overweight adults. Gut. 2015 Nov;64(11):1744-54. DOI: 10.1136/gutjnl-2014-307913
100. Samuel BS, Shaito A, Motoike T, Rey FE, Backhed F, Manchester JK, et al. Effects of the gut microbiota on host adiposity are modulated by the short-chain fatty- acid binding G protein-coupled receptor, Gpr41. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008 Oct 28;105(43):16767-72. DOI: 10.1073/pnas.0808567105
101. Tolhurst G, Heffron H, Lam YS, Parker HE, Habib AM, Diakogiannaki E, et al. Short-chain fatty acids stimulate glucagon-like peptide-1 secretion via the G-pro- tein-coupled receptor FFAR2. Diabetes. 2012 Feb;61(2):364-71. DOI: 10.2337/ db11-1019
102. Hylemon PB, Zhou H, Pandak WM, Ren S, Gil G, Dent P. Bile acids as regulatory molecules. J Lipid Res. 2009 Aug;50(8):1509-20. DOI: 10.1194/jlr. R900007- JLR200
103. Stanislawski MA, Dabelea D, Wagner BD, Iszatt N, Dahl C, Sontag MK, et al. Gut Microbiota in the First 2 Years of Life and the Association with Body Mass Index at Age 12 in a Norwegian Birth Cohort. mBio. 2018 Oct 23;9(5):e01751-18. DOI: 10.1128/mBio.01751-18
104. Korpela K, Renko M, Vänni P, Paalanne N, Salo J, Tejesvi MV, et al. Microbiome of the first stool and overweight at age 3 years: A prospective cohort study. Pediatr Obes. 2020 Nov;15(11):e12680. DOI: 10.1111/ijpo.12680
105. Scheepers LE, Penders J, Mbakwa CA, Thijs C, Mommers M, Arts IC. The inte- stinal microbiota composition and weight development in children: the KOALA Birth Cohort Study. Int J Obes (Lond). 2015 Jan;39(1):16-25. DOI: 10.1038/ ijo.2014.178
106. Vael C, Verhulst SL, Nelen V, Goossens H, Desager KN. Intestinal microflora and body mass index during the first three years of life: an observational study. Gut Pathog. 2011 May 23;3(1):8. DOI: 10.1186/1757-4749-3-8
107. Kalliomäki M, Collado MC, Salminen S, Isolauri E. Early differences in fecal microbiota composition in children may predict overweight. Am J Clin Nutr. 2008 Mar;87(3):534-8. DOI: 10.1093/ajcn/87.3.534
108. Forbes JD, Azad MB, Vehling L, Tun HM, Konya TB, Guttman DS, et al; Canadian Healthy Infant Longitudinal Development (CHILD) Study Investigators. Asso- ciation of Exposure to Formula in the Hospital and Subsequent Infant Feeding Practices with Gut Microbiota and Risk of Overweight in the First Year of Life. JAMA Pediatr. 2018 Jul 2;172(7): e181161. DOI: 10.1001/jamapediatrics.2018.1161
109. Reyna ME, Petersen C, Dai DLY, Dai R, Becker AB, Azad MB, et al. Longitudinal body mass index trajectories at preschool age: children with rapid growth have differential composition of the gut microbiota in the first year of life. Int J Obes (Lond). 2022 Jul;46(7):1351-1358. DOI: 10.1038/s41366-022-01117-z
110. Larsson MW, Lind MV, Laursen RP, Yonemitsu C, Larnkjær A, Mølgaard C, et al. Human Milk Oligosaccharide Composition Is Associated With Excessive Weight Gain During Exclusive Breastfeeding-An Explorative Study. Front Pediatr. 2019 Jul 18;7:297. DOI: 10.3389/fped.2019.00297
111. Menzel P, Vogel M, Austin S, Sprenger N, Grafe N, Hilbert C, et al. Concentrations of oligosaccharides in human milk and child growth. BMC Pediatr. 2021 Oct 30; 21(1):481. DOI: 10.1186/s12887-021-02953-0
112. Lagström H, Rautava S, Ollila H, Kaljonen A, Turta O, Mäkelä J, et al. Associations between human milk oligosaccharides and growth in infancy and early child- hood. Am J Clin Nutr. 2020 Apr 1;111(4):769-778. DOI: 10.1093/ajcn/nqaa010
113. Rozé JC, Hartweg M, Simon L, Billard H, Chen Y, Austin S, et al. Human milk oligosaccharides in breast milk and 2-year outcome in preterm infants: An exploratory analysis. Clin Nutr. 2022 Sep; 41(9):1896-1905. DOI: 10.1016/j. clnu.2022.07.024
114. Alderete TL, Autran C, Brekke BE, Knight R, Bode L, Goran MI, et al. Associations between human milk oligosaccharides and infant body composition in the first 6 mo of life. Am J Clin Nutr. 2015 Dec;102(6):1381-8. DOI: 10.3945/ajcn.115.115451
115. M Tonon K, B de Morais M, F V Abrão AC, Miranda A, B Morais T. Maternal and Infant Factors Associated with Human Milk Oligosaccharides Concentrations According to Secretor and Lewis Phenotypes. Nutrients. 2019 Jun 17;11(6):1358. DOI: 10.3390/nu11061358
116. Saben JL, Sims CR, Abraham A, Bode L, Andres A. Human Milk Oligosaccharide Concentrations and Infant Intakes Are Associated with Maternal Overweight and Obesity and Predict Infant Growth. Nutrients. 2021 Jan 29;13(2):446. DOI: 10.3390/nu13020446
117. Davis JC, Lewis ZT, Krishnan S, Bernstein RM, Moore SE, Prentice AM, et al. Growth and Morbidity of Gambian Infants are Influenced by Maternal Milk Oligosaccharides and Infant Gut Microbiota. Sci Rep. 2017 Jan 12;7:40466. DOI: 10.1038/srep40466
118. Egan M, Motherway MO, Kilcoyne M, Kane M, Joshi L, Ventura M, et al. Cross- feeding by Bifidobacterium breve UCC2003 during co-cultivation with Bifidobacterium bifidum PRL2010 in a mucin-based medium. BMC Microbiol. 2014 Nov 25;14:282. DOI: 10.1186/s12866-014-0282-7
119. Binia A, Lavalle L, Chen C, Austin S, Agosti M, Al-Jashi I, et al. Human milk oligo- saccharides, infant growth, and adiposity over the first 4 months of lactation. Pediatr Res. 2021 Sep;90(3):684-693. DOI: 10.1038/s41390-020-01328-y
120. Cheema AS, Gridneva Z, Furst AJ, Roman AS, Trevenen ML, Turlach BA, et al. Human Milk Oligosaccharides and Bacterial Profile Modulate Infant Body Composition during Exclusive Breastfeeding. Int J Mol Sci. 2022 Mar 5; 23(5):2865. DOI: 10.3390/ijms23052865
Информация о соавторах:
Доготарь Олеся Сергеевна, научный советник ООО «Нестле Россия»
Наш сайт в формате приложения всегда под рукой!
Нажмите на кнопку ниже и запустите установку приложения на следующей странице. При первом входе приложение запросит у вас разрешение на уведомления. Пожалуйста, нажмите «Да», если разрешаете приложению Nestle Baby&me Medical отправлять рекламные и информационные уведомления.
НачатьПриложение запросит у вас разрешение на уведомления. Пожалуйста, нажмите «Да», если разрешаете приложению Nestle Baby&me Medical отправлять рекламные и информационные уведомления.
Хорошо